Vhl敲除细胞系建立与验证
生成并验证Vhl-KO Renca细胞系,确认VHL缺失导致HIF靶基因上调、糖酵解增强和血管生成增加。
使用CRISPR-Cas9编辑Renca细胞产生多个Vhl-KO克隆,通过Western blot验证p-VHL和HIF-1α蛋白水平,qPCR检测下游靶基因表达,NMR测定葡萄糖摄取和乳酸分泌,皮下注射后通过CD31染色评估血管生成。
VHL loss reprograms the immune landscape to promote an inflammatory myeloid microenvironment in renal tumorigenesis
包含体外细胞模型(CRISPR编辑、代谢测定)、体内小鼠模型(肿瘤生长、免疫浸润、PET成像)、患者样本(snRNA-Seq、TMA)及功能验证(吞噬、迁移、ICB反应)和机制验证(CX3CL1缺失)
Renca小鼠肾癌细胞系(Vhl WT和Vhl-KO克隆) BALB/c小鼠皮下肿瘤模型 人ccRCC肿瘤样本
Vhl缺失状态(Vhl WT vs Vhl-KO克隆) CX3CL1表达水平及其缺失(VhlCx3cl1-DKO) 肿瘤生长测量时间点(14-21天)及抗PD-1治疗时间(第9,11,13,15天) FDG摄取测定中示踪剂注射后40分钟孵育时间 流式细胞术分析中使用的抗体克隆和稀释倍数
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
生成并验证Vhl-KO Renca细胞系,确认VHL缺失导致HIF靶基因上调、糖酵解增强和血管生成增加。
使用CRISPR-Cas9编辑Renca细胞产生多个Vhl-KO克隆,通过Western blot验证p-VHL和HIF-1α蛋白水平,qPCR检测下游靶基因表达,NMR测定葡萄糖摄取和乳酸分泌,皮下注射后通过CD31染色评估血管生成。
评估Vhl缺失对肿瘤生长速度和免疫细胞浸润的影响。
将Vhl WT和Vhl-KO Renca细胞皮下注射到BALB/c小鼠,监测肿瘤体积,通过流式细胞术和IHC分析肿瘤中CD45+、CD11b+、CD3+细胞浸润,并使用Vhl回补克隆验证Vhl特异性。
确定Vhl-KO肿瘤中髓系细胞亚群的变化及其功能特征。
通过流式细胞术分析肿瘤中PMN-MDSC、M-MDSC、TAM及其亚群(TAM1/TAM2),检测TAMs的吞噬能力(Phrodo实验)和表面标志物(CD11c、CD206),并进行bulk RNA-Seq和GSEA分析TAMs的转录特征。
评估Vhl缺失对肿瘤微环境中不同细胞类型葡萄糖摄取的影响。
通过18F-FDG PET成像和离体FDG摄取实验,比较Vhl WT和Vhl-KO肿瘤中整体肿瘤、髓系细胞、T细胞和癌细胞(CD45-)的葡萄糖摄取;使用snRNA-Seq分析人ccRCC样本中代谢通路。
评估Vhl缺失对T细胞亚群、功能和对PD-1阻断治疗反应的影响。
通过流式细胞术分析T细胞亚群(Tconv、Treg、CD8+)、活化标志物和功能障碍标志物(PD-1、TIM3),外源刺激后检测细胞因子产生,并比较Vhl WT和Vhl-KO肿瘤对anti-PD-1治疗的反应。
验证CX3CL1在Vhl缺失介导的髓系细胞招募和功能改变中的作用。
检测Vhl WT、KO和rescue细胞上清中细胞因子水平,发现CX3CL1上调;通过Transwell迁移实验评估单核细胞趋化性;生成VhlCx3cl1-DKO细胞,体内评估肿瘤生长和免疫浸润。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| Western blot | VHL抗体 | Santa Cruz Biotechnology | 17780 |
| HIF-1α抗体 | Cell Signaling Technology | 14179 | |
| β-肌动蛋白抗体 | MilliporeSigma | A2066 | |
| Flow cytometry | CD45抗体 | BioLegend | 103138 |
| CD11b抗体 | Thermo Fisher Scientific | 48-0112-82 | |
| CD3抗体 | BioLegend | 100236 | |
| CD4抗体 | BioLegend | 100540 | |
| CD8a抗体 | BioLegend | 100723 | |
| F4/80抗体 | BioLegend | 123114 | |
| CD11c抗体 | BioLegend | 117308 | |
| CD206抗体 | BioLegend | 141708 | |
| PD-1抗体 | BioLegend | 135214 | |
| TIM3抗体 | BioLegend | RMT3-23 | |
| IFN-γ抗体 | BioLegend | 505810 | |
| TNF-α抗体 | BD | 560655 | |
| phrodo红大肠杆菌微球 | Invitrogen, Thermo Fisher Scientific | P35361 | |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| IHC | CD31抗体 | Cell Signaling Technology | 77699 |
| CD45抗体 | Cell Signaling Technology | 70257 | |
| RNA提取 | RNeasy小型试剂盒 | QIAGEN | 74106 |
| iScript逆转录预混液 | Bio-Rad | -- | |
| SsoAdvanced通用SYBR Green预混液 | Bio-Rad | -- | |
| 细胞分选 | CD45微珠 | Miltenyi Biotec | 130-110-618 |
| CD4/8 TIL微珠 | Miltenyi Biotec | 130-116-480 | |
| CD11b微珠 | Miltenyi Biotec | 130-049-601 | |
| Gr1微珠 | Miltenyi Biotec | 130-094-538 | |
| 代谢分析 | Seahorse XFe 96生物分析仪 | Agilent Technologies | -- |
| 线粒体压力测试试剂盒 | Agilent Technologies | 103015-100 | |
| 细胞因子检测 | 小鼠XL细胞因子芯片 | R&D Systems | ARY028 |
| 小鼠CX3CL1/Fractalkine Quantikine ELISA试剂盒 | R&D Systems | MCS310 | |
| 细胞迁移 | 单核细胞分离试剂盒(骨髓) | Miltenyi Biotec | 130-100-629 |
| Transwell插入式培养小室 | Costar | 3421 | |
| CellTiter-Glo 2.0细胞活力检测试剂盒 | Promega | G9423 | |
| 成像 | Aperio Versa 200全自动切片扫描仪 | Leica/Aperio | -- |
| Inveon microPET | Siemens Preclinical | -- | |
| NMR | Avance III 600 MHz核磁共振谱仪 | Bruker | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 基因编辑 | CRISPR引导序列、PX458质粒、转染条件 阅读提示:Methods: CRISPR editing |
| 细胞培养 | Renca细胞培养条件(培养基、血清浓度、添加物) 阅读提示:Methods: Cell lines |
| 体内肿瘤模型 | 小鼠品系(BALB/c)、性别(雌性)、年龄(8-20周)、细胞注射数量(1×10^6)、注射体积(100-200 μL)、肿瘤生长时间(14-21天) 阅读提示:Methods: Mice, Cell lines |
| 免疫浸润分析 | 流式抗体克隆和稀释度、Fc block、破膜条件、吞噬实验条件 阅读提示:Methods: Flow cytometry |
| 代谢分析 | FDG注射剂量、孵育时间、PET成像参数、细胞分选方法 阅读提示:Methods: PET-CT imaging, 18F-FDG nutrient uptake assay |
| RNA-Seq分析 | 细胞分选策略、文库构建方法、测序深度、生物信息学分析参数 阅读提示:Methods: scRNA-Seq sample processing, snRNA-Seq sample processing, scRNA-Seq and snRNA-Seq data processing |
| CX3CL1验证 | 细胞因子阵列方法、ELISA方法、Transwell迁移实验条件 阅读提示:Methods: Cytokine detection assay and ELISA, Transwell assay |