提高小胶质细胞TREM2减少淀粉样蛋白播种并抑制疾病相关小胶质细胞

Elevating microglia TREM2 reduces amyloid seeding and suppresses disease-associated microglia

作者信息Na Zhao, Wenhui Qiao, Fuyao Li, Yingxue Ren, Jiaying Zheng, Yuka A Martens, Xusheng Wang, Ling Li, Chia-Chen Liu, Kai Chen, Yiyang Zhu, Tadafumi C Ikezu, Zonghua Li, Axel D Meneses, Yunjung Jin, Joshua A Knight, Yixing Chen, Ligia Bastea, Cynthia Linares, Berkiye Sonustun, Lucy Job, Madeleine L Smith, Manling Xie, Yong U Liu, Anthony D Umpierre, Koichiro Haruwaka, Zachary S Quicksall, Peter Storz, Yan W Asmann, Long-Jun Wu, Guojun Bu
PMID36107206
期刊J Exp Med
发布时间2022-12-05
DOI10.1084/jem.20212479

实验完整度

高

包含多种证据层级:转基因小鼠模型、组织病理学(免疫荧光、X-34)、ELISA、体内微透析、双光子成像、scRNA-seq,并进行功能验证和机制验证。

主要模型

5xFAD/TREM2-WT小鼠 5xFAD/TREM2-R47H小鼠

重点核对

诱导时间(出生至3.5月龄,2-5月龄,5-8月龄) 他莫昔芬给药方案(成年:250 mg/kg,两次,间隔48小时;新生:50 mg,连续3天) 小鼠品系(5xFAD背景,Cx3cr1CreER) Aβ斑块检测方法(MOAB-2免疫荧光、X-34标记) TREM2表达量(人TREM2 mRNA和蛋白水平)

摘要

TREM2在大脑中仅由小胶质细胞表达,并与阿尔茨海默病(AD)的风险密切相关。由于TREM2调节的小胶质细胞反应是AD发病机制的核心,增强TREM2信号已被探索作为AD治疗策略。然而,靶向TREM2的有效治疗窗口尚不清楚。在此,通过使用小胶质细胞特异性诱导型小鼠模型过表达人野生型TREM2(TREM2-WT)或R47H风险变体(TREM2-R47H),我们表明TREM2-WT表达仅在早期淀粉样蛋白播种阶段减少淀粉样蛋白沉积和神经突营养不良,而TREM2-R47H在中期淀粉样蛋白快速生长阶段加剧淀粉样蛋白负担。单细胞RNA测序揭示在早期阶段TREM2-WT表达抑制疾病相关小胶质细胞(DAM)特征并减少DAM群体,而在中期阶段检测到TREM2-R47H表达上调抗原呈递途径。总之,我们的发现强调了TREM2在调节AD发病机制中的动态作用,并强调了在AD发展早期增强TREM2功能的有益效果。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TREM2在AD不同病理阶段(淀粉样蛋白播种、快速生长和饱和阶段)对小胶质细胞功能和淀粉样病理的作用及其机制是什么?
核心机制
TREM2-WT通过增强小胶质细胞对Aβ的清除(降低ISF Aβ42半衰期)和抑制DAM基因特征,在早期阶段发挥保护作用;TREM2-R47H在中期阶段通过上调抗原呈递途径可能加剧淀粉样病理。
主要证据
在5xFAD/TREM2小鼠中,TREM2-WT诱导(0-3.5月龄)显著降低淀粉样斑块负担、纤维状Aβ、Aβ42水平及神经突营养不良,并缩短ISF Aβ42半衰期;scRNA-seq显示TREM2-WT抑制DAM特征和细胞群。TREM2-R47H诱导(2-5月龄)增加淀粉样负担和营养不良,scRNA-seq显示抗原呈递途径上调。
研究意义
增强TREM2功能在AD早期有潜在治疗益处,提示治疗窗口应在疾病早期。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立小胶质细胞特异性诱导型TREM2小鼠模型

验证TREM2-WT或TREM2-R47H的可诱导、小胶质细胞特异性表达。

使用Rosa26靶向载体构建TREM2-WT或TREM2-R47H敲入小鼠,与Cx3cr1CreER小鼠杂交,通过他莫昔芬诱导表达。通过qPCR检测mRNA水平,免疫荧光确认GFP和TREM2在IBA1+细胞中表达。

2

评估早期阶段TREM2表达对淀粉样病理的影响

确定TREM2在早期Aβ播种阶段(0-3.5月龄)表达对淀粉样沉积的影响。

在5xFAD/TREM2小鼠中诱导TREM2表达(出生至3.5月龄),通过免疫荧光(MOAB-2)、X-34标记、ELISA检测Aβ水平,免疫荧光检测营养不良性神经突(LAMP1)。

3

评估中期阶段TREM2表达对淀粉样病理的影响

确定TREM2在快速生长阶段(2-5月龄)表达对淀粉样沉积的影响。

在5xFAD/TREM2小鼠中诱导TREM2表达(2-5月龄),通过免疫荧光、X-34、ELISA检测淀粉样病理,免疫荧光检测营养不良性神经突。

4

评估晚期阶段TREM2表达对淀粉样病理的影响

确定TREM2在饱和阶段(5-8月龄)表达对淀粉样沉积的影响。

在5xFAD/TREM2小鼠中诱导TREM2表达(5-8月龄),通过免疫荧光、X-34、ELISA检测淀粉样病理,检测营养不良性神经突。

5

体内微透析检测ISF Aβ清除动力学

评估TREM2表达对脑间质液中Aβ清除的影响。

在早期诱导的小鼠中进行体内微透析,收集海马ISF样品,基线检测Aβ42水平,注射γ-分泌酶抑制剂后监测Aβ42衰减计算半衰期。

6

双光子成像监测小胶质细胞动力学

评估TREM2表达对小胶质细胞运动性和对淀粉样斑块反应的影响。

在6月龄5xFAD/TREM2小鼠中,用methoxy-X04标记斑块,通过慢性颅窗进行双光子成像,测量小胶质细胞过程速度及在斑块周围的聚集。

7

单细胞RNA测序分析小胶质细胞亚群

揭示TREM2表达对小胶质细胞转录组和亚群的影响。

分离皮质单细胞,进行scRNA-seq,聚类注释细胞类型,分析小胶质细胞亚群(HM、DAM、MHCII+等),比较TREM2诱导和对照组的基因表达差异。

8

验证TREM2对DAM基因网络的影响

验证TREM2表达抑制DAM基因特征的结论。

通过RNAscope原位杂交检测Apoe mRNA,结合免疫荧光进行验证;CD68染色评估吞噬性小胶质细胞;重新分析已发表数据集(Wang et al. 2020)进行WGCNA验证。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Cx3cr1CreER小鼠The Jackson Laboratory021160
5xFAD小鼠The Jackson Laboratory34848
DMEM培养基----
抗人TREM2抗体 (16E1)in-house at Mayo Clinic--
抗IBA1抗体Wako019-19741
抗GFAP抗体BioGenexPU020-UP
抗NeuN抗体MilliporeMAB377
抗Aβ抗体 (MOAB-2)Abcamab126649
抗LAMP1抗体Abcamab25245
抗CD68抗体VWRMCA1957
抗CD11c抗体Thermo Fisher Scientific14011482
X-34染料Sigma-AldrichSML1953
抗HA-HRP抗体Sigma-Aldrich12013819001
抗人TREM2抗体Cell Signaling Technology91068
抗β-肌动蛋白抗体Sigma-AldrichA2228
Aβ40/42 ELISA试剂盒----
微透析探针(30-kD MWCO膜)Bioanalytical Systems--
引导套管(BR型)Bioanalytical Systems--
γ-分泌酶抑制剂LY411575----
甲氧基-X04----
钛宝石Mai Tai DeepSee激光器Spectra Physics--
奥林巴斯LUMPLFLN 40×水浸物镜Olympus--
10x Genomics Chromium单细胞3'基因表达V3试剂盒10x Genomics--
神经组织解离试剂盒(P)Miltenyi Biotec130-092-628
髓鞘去除磁珠IIMiltenyi Biotec130-096-733
红细胞裂解液Miltenyi Biotec130-094-183
死细胞去除试剂盒Miltenyi Biotec130-090-101
RNAscope多重荧光试剂手动检测试剂盒v2Advanced Cell Diagnostics323100
小鼠Apoe RNAscope探针Advanced Cell Diagnostics313271
DapB RNAscope探针(阴性对照)Advanced Cell Diagnostics310043
小鼠Ppib RNAscope探针(阳性对照)Advanced Cell Diagnostics313911
Opal 620荧光染料AKOYA Biosciences--
Seurat v3.1----
Cell Ranger v3.0.010x Genomics--
miloR----
Cytoscape----
GraphPad Prism v8.4.3GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型与诱导
小鼠基因型(5xFAD;TREM2-WT+/+;Cx3cr1CreER/+或5xFAD;TREM2-R47H+/+;Cx3cr1CreER/+),诱导阶段(早期、中期、晚期),他莫昔芬给药方案(成年:250 mg/kg两次,间隔48小时;新生:50 mg/天连续3天),对照处理
阅读提示:Materials and methods: Mouse models
淀粉样病理评估
免疫荧光抗体(MOAB-2),X-34浓度(10 µM),ELISA检测的Aβ种类(Aβ40/42)和脑分浆级分(TBS、TBSX、GND),LAMP1染色
阅读提示:Materials and methods: Immunofluorescence staining, ELISA; Figure legends 2-4
体内微透析
探针植入坐标(海马:后囟后3.1 mm,外侧2.5 mm,深度1.2 mm at 12°角),灌注液成分(含4% BSA的人工脑脊液),流速(1.0 µl/min),样本采集间隔(60-90分钟),γ-分泌酶抑制剂剂量(LY411575,5 mg/kg)
阅读提示:Materials and methods: In vivo microdialysis
双光子成像
慢性颅窗手术,methoxy-X04剂量(5 mg/kg)和给药时间(成像前24小时),激光波长(GFP 920 nm,methoxy-X04 700 nm),成像区域(体感皮层),麻醉方案(异氟烷),图像分析参数(过程速度、30 μm半径内小胶质细胞数量)
阅读提示:Materials and methods: Two-photon imaging
单细胞RNA测序
皮质解离方案(使用Neural Tissue Dissociation kit),靶向捕获细胞数(约6000-9000),10x Genomics V3试剂盒,Illumina测序深度(25,000-50,000 reads/cell),数据分析参数(Seurat、MAST模型、DEG阈值FDR<0.05且|log2FC|>0.25)
阅读提示:Materials and methods: Cortical single-cell isolation, scRNA-seq quality control, mapping, and differential expression analysis