炎症-免疫相关基因筛选
鉴定膀胱癌中与炎症和免疫相关的关键基因,并评估其临床意义。
整合TCGA和GEO的转录组数据、蛋白质组和体内抗PD-L1 CRISPR筛选数据,通过差异表达分析和无监督聚类,筛选出RRBP1等候选基因;并在独立队列中验证RRBP1表达与预后的关联。
Targeting RRBP1 reverses immune evasion and enhances immunotherapy efficacy via the CXCL10-CXCR3 axis in bladder cancer
包含转录组、蛋白质组和CRISPR筛选数据,结合体外细胞功能实验、体内动物模型、患者样本分析以及单细胞RNA测序等多层次验证,并进行了机制通路和联合治疗的验证。
膀胱癌细胞系T24(人)和MB49(小鼠) C57BL/6J小鼠皮下移植瘤模型 BALB/c裸鼠皮下移植瘤模型 尾静脉肺转移模型 患者来源的膀胱癌组织样本和免疫治疗队列
RRBP1敲低或药理学抑制(radezolid)对BC细胞增殖、迁移和侵袭的影响 RRBP1表达水平与患者预后、CD8+ T细胞浸润及免疫治疗反应的相关性 CD8+ T细胞在RRBP1调控的抗肿瘤免疫中的关键作用(通过CD8+ T细胞清除实验验证) CXCL10-CXCR3轴在RRBP1抑制增强的抗肿瘤免疫中的作用(使用抗CXCL10中和抗体或CXCR3拮抗剂AMG487验证) RRBP1抑制与抗PD-L1联合治疗在体内对肿瘤生长和免疫浸润的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定膀胱癌中与炎症和免疫相关的关键基因,并评估其临床意义。
整合TCGA和GEO的转录组数据、蛋白质组和体内抗PD-L1 CRISPR筛选数据,通过差异表达分析和无监督聚类,筛选出RRBP1等候选基因;并在独立队列中验证RRBP1表达与预后的关联。
确定RRBP1对膀胱癌细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
使用shRNA敲低或radezolid药物抑制RRBP1,通过CCK-8、克隆形成和Transwell实验评估细胞增殖、迁移和侵袭能力。
验证RRBP1在体内对肿瘤生长和转移的影响。
将稳定敲低RRBP1或对照的MB49细胞皮下注射至C57BL/6J小鼠,T24细胞皮下注射至裸鼠;通过尾静脉注射构建肺转移模型;定期测量肿瘤体积和重量,并评估肺转移灶。
探究RRBP1抑制对肿瘤免疫微环境,特别是CD8+ T细胞的影响。
通过IHC、mIHC和流式细胞术检测肿瘤组织中CD8+ T细胞的浸润水平;使用scRNA-seq分析CD8+ T细胞亚群的差异,并进行GSEA和KEGG通路富集分析。
验证CD8+ T细胞在RRBP1调控的抗肿瘤免疫中的必要性。
使用抗小鼠CD8单克隆抗体清除CD8+ T细胞,观察shRRBP1或radezolid治疗的肿瘤生长变化。
阐明RRBP1调控CXCL10表达的分子机制。
通过RNA-seq筛选RRBP1抑制后差异表达的细胞因子,发现CXCL10;RT-qPCR和ELISA验证表达变化;RNA免疫共沉淀(RIP)确认RRBP1与CXCL10 mRNA的结合;使用放线菌素D检测mRNA稳定性。
验证RRBP1抑制通过CXCL10-CXCR3轴增强CD8+ T细胞功能。
通过体外共培养实验,使用抗CXCL10中和抗体或CXCR3拮抗剂AMG487,检测CD8+ T细胞的细胞毒性、迁移和功能标志物(IFN-γ、GZMB)表达;在动物模型中,用AMG487或抗CXCL10抗体处理,观察对肿瘤生长的逆转作用。
评估RRBP1抑制与抗PD-L1治疗的协同抗肿瘤效果。
在MB49移植瘤模型中,使用shRNA敲低或radezolid抑制RRBP1,并联合抗PD-L1抗体治疗,评估肿瘤生长、小鼠生存和免疫细胞浸润情况。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 重组人IL-2 | -- | -- | |
| CD8+ T细胞分离 | MagCellect人CD8+ T细胞分离试剂盒 | R&D Systems | -- |
| MagCellect小鼠CD8+ T细胞分离试剂盒 | R&D Systems | -- | |
| 动物实验(体内成像) | D-荧光素钠盐 | Absin | 1103404-75-7 |
| IVIS Spectrum小动物活体成像系统 | PerkinElmer | -- | |
| 动物实验(免疫治疗) | 抗PD-L1单克隆抗体 | Bio X Cell | BE0101 |
| 动物实验(CD8+ T细胞清除) | 抗小鼠CD8单克隆抗体 | Bio X Cell | BE0117 |
| 动物实验(药物处理) | 雷得唑利 | -- | -- |
| 单细胞RNA测序 | 人肿瘤组织解离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-096-730 |
| 红细胞裂解液 | Miltenyi Biotec | 130-094-183 | |
| Chromium Next GEM 单细胞3'试剂盒V.3.1(双索引) | 10x Genomics | -- | |
| Qubit 1X dsDNA HS检测试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Qubit V.4.0荧光计 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| StepOnePlus实时荧光定量PCR仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| LabChip Touch系统 | -- | -- | |
| Illumina NovaSeq 6000测序平台 | Illumina | -- | |
| 流式细胞术 | MACS组织保存液 | Miltenyi Biotec | 130-100-008 |
| 透明质酸酶 | Solarbio | H8030 | |
| 胶原酶I型 | Solarbio | C8140 | |
| MACS细胞筛网 | Miltenyi Biotec | 130-098-462 | |
| Fc受体阻断剂 | Elabscience | E-AB-F0997A | |
| 可固定活力染料 | BD Pharmingen | 565388 | |
| PerCP/Cyanine5.5偶联抗小鼠CD45抗体 | Elabscience | E-AB-F1136J | |
| APC偶联抗小鼠CD3抗体 | Elabscience | E-AB-F1013E | |
| PE偶联抗小鼠CD8抗体 | Elabscience | E-AB-F1104D | |
| PE偶联抗小鼠颗粒酶B抗体 | Thermo Fisher Scientific | 12-8898-82 | |
| PE偶联抗小鼠IFN-γ抗体 | Elabscience | E-AB-F1101D | |
| FITC偶联抗小鼠颗粒酶B抗体 | Thermo Fisher Scientific | 11-8898-82 | |
| FITC偶联抗小鼠IFN-γ抗体 | Elabscience | E-AB-F1101C | |
| 克隆形成实验 | 结晶紫染液 | Beyotime Biotechnology | C0121 |
| GelCount自动菌落计数器 | Oxford Optronix | -- | |
| ELISA | 小鼠CXCL10 ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY466-05 |
| 人CXCL10 ELISA试剂盒 | Jianglai Biological | JL28903 | |
| RT-qPCR | PrimeScript RT试剂盒(Perfect Real Time) | Takara | -- |
| Roche LightCycler 480II实时荧光定量PCR检测系统 | Roche | -- | |
| Western blot分析 | BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Western blot分析(一抗) | 抗RRBP1抗体 | Proteintech | 22015-1-AP |
| 抗H3K36me3抗体 | Proteintech | 61022 | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| Western blot分析(二抗) | HRP偶联二抗 | Jackson ImmunoResearch | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养和基因敲低 | 细胞系(T24、MB49)的来源和培养条件;RRBP1 shRNA序列及转染方法;敲低效率验证方法。 阅读提示:Methods: Cell culture and treatment; Figure 2A, B |
| 体外功能实验 | CCK-8增殖实验、克隆形成实验、Transwell迁移和侵袭实验的具体条件(如细胞数、培养时间、基质胶浓度等)。 阅读提示:Methods: Cell culture and treatment; Figure 2 legend |
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6J、BALB/c裸鼠)、年龄、性别;细胞注射数量(MB49 5×10^5、T24 5×10^6);肿瘤体积计算公式;实验组和对照组样本量(每组6只)。 阅读提示:Methods: Tumor models and treatments; Figure 2 legend |
| CD8+ T细胞清除和免疫治疗 | 抗CD8抗体(BE0117)和抗PD-L1抗体(BE0101)的给药剂量(200μg/只)和时间点(如第7、9、11、13、15天);同型对照的使用。 阅读提示:Methods: Tumor models and treatments; Figure 4 and Figure 7 legends |
| 流式细胞术 | 组织消化酶(透明质酸酶25μg/mL,胶原酶I 160μg/mL)和消化时间(37°C 60min);使用的抗体及其荧光标记、克隆号和稀释度。 阅读提示:Methods: Flow cytometry; Figure 3 and Figure 4 Legends |
| 单细胞RNA测序 | 细胞解离、细胞计数和活力评估、目标细胞数(每样本约16,000个细胞);10x Genomics试剂盒版本和建库流程;测序平台和读长(150bp双端);数据分析软件及参数(Cell Ranger V.6.0.1, Seurat等)。 阅读提示:Methods: Single-cell RNA sequencing |
| 分子机制实验 | RIP实验中使用的抗RRBP1抗体和qPCR引物;mRNA稳定性实验中放线菌素D的浓度和处理时间点。 阅读提示:Methods: Real-time PCR; Western blot analysis; Figure 5 legend |
| CXCL10-CXCR3阻断 | 抗CXCL10中和抗体和AMG487的给药剂量、给药方式(腹腔注射)和处理时间;体外共培养实验的条件(如效靶比、培养时间)。 阅读提示:Methods: Cell culture and treatment; Tumor models and treatments; Figure 6 legend |
| 统计学分析 | 统计检验方法(如t检验、log-rank检验、Spearman相关、two-way ANOVA)以及显著性阈值(p<0.05)。 阅读提示:Methods: Statistical analysis |