Epac1通过JAK/STAT信号通路抑制眼眶成纤维细胞活化以改善甲状腺相关眼病样特征

Epac1 Inhibits Orbital Fibroblast Activation to Ameliorate Thyroid-Associated Orbitopathy-Like Features Through the JAK/STAT Signaling Pathway

作者信息Rong Liu, Xin Xin, Shunguo Ma, Jinmin Guo, Chenmian Wu, Xin Qi, Ban Luo
PMID40736178
发布时间2025-07-01
DOI10.1167/iovs.66.9.68

实验完整度

包含临床样本、动物模型和细胞实验等多个独立证据层级,并有功能验证(过表达/敲低)和机制验证(STAT3磷酸化及抑制剂回补)。

主要模型

人眼眶成纤维细胞(正常OFs和TAO OFs) Ad-TSHR诱导的TAO小鼠模型

重点核对

TAO患者与健康对照的眼眶组织样本(n=6) TGFβ1刺激浓度(10 ng/mL)和处理时间(48小时) Epac1过表达质粒和sh-Epac1敲低质粒的转染效率 AAV-Epac1眼眶注射剂量(10 μL,1×10^9 VG)和时间点(6、12、18周) JAK/STAT抑制剂Stattic使用浓度(2 μg/mL)和处理时间(24小时)

摘要

目的:眼眶成纤维细胞(OF)的活化在甲状腺相关眼病(TAO)的发生发展中起重要作用。Epac1作为环磷酸腺苷(cAMP)效应器,已被认为是cAMP抗纤维化特性的关键介质。本研究探讨了Epac1在OF活化中的作用和机制。方法:收集TAO患者和正常健康志愿者的临床眼眶样本,并使用表达人TSHR A亚基的腺病毒(Ad-TSHR)建立TAO小鼠模型,评估其组织病理学特征并检测Epac1和波形蛋白的表达水平。分离临床TAO样本来源的OF(TAO OFs)和健康人来源的OF(正常OFs),并通过免疫荧光(IF)染色进行鉴定。将健康OFs和TAO OFs转染Epac1过表达质粒(Epac1)以过表达Epac1或sh-Epac1质粒以敲低Epac1,经TGFβ1处理,然后检查细胞表型以及Epac1和纤维化相关标志物(α-SMA、纤连蛋白和胶原蛋白)的表达水平。此外,将过表达Epac1的腺相关病毒(AAV-Epac1)注射到TAO小鼠眼眶组织中,以研究Epac1对TGFβ1刺激的OFs在体内的抗纤维化作用。此外,研究了TGFβ1刺激的TAO OFs和TAO小鼠模型中STAT3的磷酸化。使用JAK/STAT信号抑制剂Stattic探讨JAK/STAT信号在Epac1功能中的参与。结果:临床TAO样本和TAO小鼠模型均表现出显著改变的组织病理学、Epac1表达降低和波形蛋白水平升高。TGFβ1刺激显著促进正常OFs和TAO OFs的细胞活力和迁移,并升高α-SMA、纤连蛋白、波形蛋白、胶原蛋白I和胶原蛋白III的表达水平。然而,OFs中Epac1过表达可显著减弱TGFβ1对正常和TAO OFs的促纤维化作用,表现为抑制细胞活力和迁移以及降低纤维化标志物的表达。而Epac1敲低加重了TGFβ1诱导的纤维化。在体内,Epac1过表达也改善了TAO模型小鼠的TAO样症状。机制上,Epac1过表达在体外和体内均抑制STAT3磷酸化。Stattic有效减弱了Epac1敲低对TGFβ1处理的TAO OFs的影响。结论:Epac1通过介导JAK/STAT信号通路是TAO纤维化和炎症过程的关键调节因子。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Epac1在眼眶成纤维细胞活化及甲状腺相关眼病发生发展中的作用和机制是什么?
核心机制
Epac1通过抑制JAK/STAT信号通路(特别是STAT3磷酸化)来抑制眼眶成纤维细胞的活化、增殖和迁移,从而减轻纤维化。
主要证据
在TGFβ1刺激的正常和TAO OFs中,Epac1过表达抑制细胞活力、迁移和纤维化标志物(α-SMA、纤连蛋白、波形蛋白、胶原蛋白I和III)的表达,而Epac1敲低则增强这些效应;在TAO小鼠模型中,Epac1过表达改善组织病理学特征并降低p-STAT3水平;STAT3抑制剂Stattic可逆转Epac1敲低的作用。
研究意义
Epac1是TAO纤维化和炎症过程的关键调节因子,通过JAK/STAT信号通路介导其作用,可能为TAO治疗提供潜在的靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本分析

验证TAO患者眼眶组织中Epac1的表达和病理特征是否异常。

收集TAO患者和健康对照的眼眶脂肪组织,进行H&E和Masson染色评估组织病理,通过IHC、qRT-PCR和免疫印迹检测Epac1和vimentin表达。

2

TAO小鼠模型建立与验证

建立TAO小鼠模型,并验证模型中Epac1和纤维化标志物的表达变化。

使用Ad-TSHR免疫BALB/c小鼠,通过检测血清T4、TSH、TRAb水平和组织病理学评估模型成功,检测眼眶组织中Epac1和vimentin表达。

3

原代眼眶成纤维细胞分离与鉴定

从临床样本中分离和培养原代OFs,并验证其细胞特性。

从TAO患者和健康对照的眼眶组织中分离OFs,通过IF染色检测α-SMA水平进行鉴定。

4

Epac1过表达和敲低对体外OFs功能的影响

评估Epac1过表达或敲低对TGFβ1诱导的OFs活化、迁移和纤维化标志物表达的影响。

将OFs转染Epac1过表达质粒或sh-Epac1,然后用TGFβ1处理,进行CCK-8、划痕愈合、Transwell迁移、IF染色、ELISA、qRT-PCR和免疫印迹检测。

5

体内验证Epac1过表达对TAO小鼠的保护作用

验证在体内Epac1过表达能否改善TAO小鼠的症状和组织病理。

通过眼眶注射AAV-Epac1在TAO小鼠中过表达Epac1,评估眼部外观、组织病理学变化以及相关蛋白表达。

6

机制探索:JAK/STAT信号通路参与Epac1功能

探索Epac1是否通过JAK/STAT信号通路(特别是STAT3磷酸化)调控OFs功能。

检测TGFβ1刺激的TAO OFs和TAO小鼠眼眶组织中STAT3磷酸化水平;使用JAK/STAT抑制剂Stattic处理,评估其对Epac1敲低效应的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Masson三色染色试剂盒Beyotime--
奥林巴斯显微镜Olympus--
抗Epac1抗体Affinity BioscienceDF6922
抗CD40抗体Affinity BioscienceAF5336
抗胶原蛋白I抗体Proteintech14695-1-AP
抗α-SMA抗体Proteintech55135-1-AP
HRP标记的山羊抗兔IgGBoster--
DAB显色液Boster--
TRIzol试剂----
StarScript II逆转录混合试剂盒(含gDNA去除剂)Genstar--
Fast SYBR Green qPCR预混液Genstar--
7500实时荧光定量PCR系统Applied Biosystems--
RIPA裂解液----
蛋白酶/磷酸酶抑制剂混合物Beyotime--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
抗α-SMA抗体Proteintech55135-1-AP
抗胶原蛋白I抗体Proteintech14695-1-AP
抗波形蛋白抗体Proteintech10366-1-AP
抗Epac1抗体AffinityDF6922
抗纤连蛋白抗体Proteintech15613-1-AP
抗胶原蛋白III抗体Proteintech22734-1-AP
抗磷酸化STAT3抗体CusabioCSB-RA022812A727phHU
抗STAT3抗体Proteintech10253-2-AP
抗FABP4抗体Proteintech12802-1-AP
抗β-肌动蛋白抗体CusabioCSB-MA000187
胰酶/EDTA消化液Gibco--
DMEM培养基Gibco--
青霉素和链霉素Sorlabio--
转化生长因子β1MCE--
Stattic(STAT3抑制剂)MCE--
H89(PKA抑制剂)MCE--
DAPI(核染色试剂)Life TechnologiesP36931
抗荧光淬灭封片剂Beyotime--
荧光显微镜Nikon--
OriTrans PEI-DNA转染试剂Ori-Bio--
CCK-8试剂盒Beyotime--
多功能酶标仪Bio-Rad--
Transwell小室(8.0 μm孔径膜)Corning--
结晶紫Sigma-Aldrich--
倒置光学显微镜Nikon--
人胶原蛋白I ELISA试剂盒CusabioCSB-E08082h
小鼠T4 ELISA试剂盒Quanzhou Ruixin BiotechRXJW202844M
小鼠TSH ELISA试剂盒Quanzhou Ruixin BiotechRX203002M
小鼠TRAb ELISA试剂盒mlbioml001928

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本采集
TAO患者和健康对照的样本来源、年龄、性别、疾病阶段,以及排除标准(吸烟、近期糖皮质激素使用)
阅读提示:Methods: Clinical Sample Collection
TAO小鼠模型构建
小鼠品系、性别、周龄、Ad-TSHR注射剂量、注射时间点、麻醉方式、注射部位、AAV-Epac1剂量和时间
阅读提示:Methods: Immunization of BALB/c Mice With TSHR-Adenovirus
原代细胞培养与处理
细胞培养条件(培养基、血清、抗生素)、细胞代数、TGFβ1浓度和时间、Stattic和H89浓度及时间
阅读提示:Methods: Primary Human OF Isolation, Cell transfection
Epac1过表达/敲低
质粒载体类型、转染试剂、转染时间、细胞密度、转染效率验证方法
阅读提示:Methods: Cell Transfection, Supplementary Figure S1
功能检测
CCK-8检测时间点和细胞数、划痕愈合实验初始细胞密度、Transwell迁移实验细胞数和孔径、IF染色抗体稀释度、ELISA方法
阅读提示:Methods: Cell Counting Kit-8 Assay, Scratch Wound Healing, Transwell Migration, Immunofluorescent Staining, Enzyme-Linked Immunosorbent Assay
分子表达检测
qRT-PCR引物序列、Western blot抗体及稀释度、蛋白上样量、内参选择
阅读提示:Methods: Quantitative Real-Time Polymerase Chain Reaction, Immunoblotting, Supplementary Table S1
组织病理学分析
组织固定方式、切片厚度、染色方法(H&E、Masson)、抗体及稀释度、显微镜型号
阅读提示:Methods: Histopathological Examination, Immunohistochemical Staining
统计设计
样本量(n)、重复次数、数据分布检验方法、组间比较方法、显著性阈值
阅读提示:Methods: Statistical Analysis