建立创伤/卒中模型并评估肺损伤
验证创伤或卒中后是否发生远端肺损伤以及组织驻留巨噬细胞是否参与。
小鼠分别接受假骨折或MCAO手术,24小时后检测肺组织病理、炎症因子表达、中性粒细胞浸润和肺水含量。
Tissue-resident macrophages exacerbate lung injury after remote sterile damage
包含体外细胞模型(BMDMs、THP1)、体内动物模型(创伤、卒中)、过继转移实验、基因敲除小鼠及机制验证(免疫共沉淀、共定位等),多个独立证据层级相互支持。
小鼠创伤模型(假骨折) 小鼠卒中模型(大脑中动脉闭塞) 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) 人单核细胞系THP1
创伤模型:假骨折,2根股骨和2根胫骨,0.3ml骨溶液注射至后腿肌肉,观察12小时 卒中模型:MCAO 45分钟后再灌注,观察12小时 巨噬细胞清除:氯膦酸盐脂质体(i.t. 60μl、i.v. 100μl)创伤/卒中前24小时处理 RAGE中和抗体:10mg/kg静脉注射,创伤/卒中前2小时 厄洛替尼:100mg/kg口服灌胃,连续3天,创伤/卒中前
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证创伤或卒中后是否发生远端肺损伤以及组织驻留巨噬细胞是否参与。
小鼠分别接受假骨折或MCAO手术,24小时后检测肺组织病理、炎症因子表达、中性粒细胞浸润和肺水含量。
评估组织驻留巨噬细胞对创伤/卒中后肺损伤的必要性。
通过气管内和静脉注射氯膦酸盐脂质体清除肺驻留巨噬细胞,然后进行创伤/卒中手术,评估肺损伤程度。
确定创伤/卒中后循环警报素是否升高,以及是否通过RAGE介导肺驻留巨噬细胞炎症。
检测创伤后血浆HMGB1、AGE、S100A9水平;使用sRAGE、中和抗体等降低循环警报素,观察肺损伤变化;体外用警报素或创伤血浆刺激BMDMs。
确认RAGE在肺驻留巨噬细胞中介导创伤/卒中后肺损伤的炎症反应。
使用Rage−/−小鼠,过继转移Rage−/−巨噬细胞到WT小鼠,或用RAGE中和抗体处理,观察肺损伤和炎症变化。
揭示RAGE激活后膜转运的动态过程及其在炎症放大中的作用。
体外刺激BMDMs或THP1细胞,检测RAGE表面表达、总蛋白和mRNA随时间的变化;使用dynasore、Rab5 siRNA干扰内化,评估对RAGE转运和炎症的影响。
验证RAGE激活是否通过EGFR-P38信号通路调节RAGE膜转运和炎症。
检测创伤后肺驻留巨噬细胞中EGFR磷酸化情况;体外用RAGE配体刺激WT/Rage−/−/Egfr−/− BMDMs,检测EGFR和P38磷酸化,并通过IP、免疫荧光验证RAGE-EGFR-P38相互作用;使用EGFR抑制剂或SB203580观察对RAGE膜转运和炎症的影响。
评估靶向EGFR在体内对创伤/卒中后肺损伤的治疗潜力。
给小鼠口服厄洛替尼预处理,或过继转移Egfr−/−巨噬细胞到巨噬细胞清除的小鼠,然后进行创伤/卒中手术,评估肺损伤和炎症。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| RPMI-1640培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子 | -- | -- | |
| 细胞分化 | 佛波酯 | Sigma-Aldrich | -- |
| 药物处理 | 重组小鼠HMGB1 | BioLegend | 764006 |
| 重组人HMGB1 | BioLegend | 557804 | |
| 晚期糖基化终末产物 | Abcam | 51995 | |
| 重组小鼠S100A9蛋白 | R&D Systems | 2065-S9-050 | |
| 可溶性RAGE | Biovendor | RD272590100 | |
| LR-90 | MedChem Express | HY-76383 | |
| 帕喹莫德 | Sigma | SML2883 | |
| FPS-ZM1 | R&D Systems | 6237 | |
| 厄洛替尼 | Selleck.cn | -- | |
| 达纳索尔 | Sigma | D7693 | |
| PD168393 | Sigma | PZ0285 | |
| SB203580 | -- | -- | |
| 中和抗体 | HMGB1中和抗体(克隆3E8) | BioLegend | 651402 |
| RAGE中和抗体 | R&D Systems | AF1145 | |
| 免疫印迹 | RAGE抗体 | Abcam | ab216329 |
| 流式细胞术 | 小鼠Alexa Fluor 488偶联RAGE抗体 | R&D Systems | FAB11795G |
| 人Alexa Fluor 488抗RAGE抗体 | Abcam | ab237361 | |
| 小鼠Alexa Fluor 647偶联RAGE抗体 | R&D Systems | FAB11795R | |
| 抗MerTK-APC-CY7抗体 | BioLegend | 151519 | |
| MerTK-PE抗体 | BioLegend | 151505 | |
| CD64-FITC抗体 | BioLegend | 161007 | |
| CD64-PE抗体 | BioLegend | 161004 | |
| CD11c-APC抗体 | BioLegend | 117323 | |
| CD11b抗体 | BioLegend | 101211 | |
| 抗小鼠CD45-PE/Cy7抗体 | BD Biosciences | 552848 | |
| CD45-BUV395抗体 | BD Biosciences | 567451 | |
| CD45-FITC抗体 | BD Biosciences | 553079 | |
| Ly6G-APC/Cy7抗体 | BD Biosciences | 560600 | |
| Ly6G-PE抗体 | BD Biosciences | 551461 | |
| F4/80-AF488抗体 | BD Biosciences | 567201 | |
| F4/80-PE抗体 | BD Biosciences | 565410 | |
| Western blot | 总EGFR抗体 | Cell Signaling Technology | 4267 |
| 磷酸化EGFR抗体 | Cell Signaling Technology | 3777 | |
| 磷酸化P38抗体 | Cell Signaling Technology | 4511 | |
| 总P38抗体 | Cell Signaling Technology | 8690 | |
| β-actin抗体 | Cell Signaling Technology | 3700 | |
| 抗Rab5抗体 | ThermoFisher Scientific | PA5-88260 | |
| HRP标记抗小鼠IgG | Cell Signaling Technology | 7076 | |
| HRP标记抗兔IgG | Cell Signaling Technology | 7074 | |
| 流式细胞术 | RAGE抗体(AF647) | Santa Cruz Biotechnology | sc-365154 |
| 小鼠IgG同型对照 | ThermoFisher Scientific | 02-6502 | |
| 免疫荧光 | 山羊抗兔IgG (H+L) Alexa Fluor 488 | ThermoFisher Scientific | A-11008 |
| 驴抗兔IgG (H+L) Alexa Fluor 594 | ThermoFisher Scientific | A-21203 | |
| 山羊抗小鼠IgG (H+L) Alexa Fluor 488 | ThermoFisher Scientific | A-11001 | |
| 驴抗小鼠IgG (H+L) Alexa Fluor 594 | ThermoFisher Scientific | A-21203 | |
| 细胞活性 | LIVE/DEAD Fixable Violet死细胞染色试剂盒 | ThermoFisher Scientific | L34958 |
| siRNA转染 | Rab5 siRNA | ThermoFisher Scientific | 152489 |
| 细胞标记 | CellTracker Deep Red染料 | ThermoFisher Scientific | C34565 |
| ELISA | 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 88-7324-88 |
| 人TNF-α ELISA试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 88-7346-88 | |
| 小鼠CXCL1 ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY453 | |
| 生化检测 | HMGB1 ELISA试剂盒 | IBL International | 30164033 |
| AGE检测试剂盒 | Abcam | ab238539 | |
| 小鼠S100A9 ELISA试剂盒 | R&D Systems | 2065-S9-050 | |
| 内毒素检测 | Pierce显色内毒素定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | A39552S |
| RNA提取 | TRIzol RNA提取试剂 | Life Technologies | -- |
| 逆转录 | 逆转录试剂盒 | Takara | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 蛋白印迹 | PVDF膜 | Millipore | -- |
| ECL化学发光试剂 | Millipore | -- | |
| 免疫沉淀 | 蛋白A/G磁珠 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 流式分选 | BD LSRFortessa流式细胞仪 | BD Bioscience | -- |
| SORP-aria流式分选仪 | BD Biosciences | -- | |
| 手术器械 | 6-0硅胶涂层单丝缝合线 | Doccol | -- |
| 数据分析 | GraphPad Prism 9.0 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 创伤模型 | 小鼠品系、性别、年龄、体重;假骨折手术细节(骨折部位、骨溶液制备、注射量);观察时间点 阅读提示:Methods: Trauma mouse model; Figure legends |
| 卒中模型 | MCAO持续时间、再灌注时间、手术细节;排除标准 阅读提示:Methods: Stroke mouse model |
| 巨噬细胞清除 | 氯膦酸盐脂质体给药途径(i.t.、i.v.)、剂量、时间点;清除效率验证 阅读提示:Methods: Macrophage depletion; Figure legends |
| 药物处理 | sRAGE、中和抗体、LR-90、paquinimod、FPS-ZM1、厄洛替尼的给药途径、剂量、时间点 阅读提示:Methods: Drug administration |
| 体外细胞刺激 | BMDMs和THP1细胞的培养条件、分化方法;刺激物浓度(AGE、HMGB1、S100A9)、刺激时间;预处理方案 阅读提示:Methods: BMDM isolation and culture, Cell line and cell culture, Drug administration |
| RAGE膜转运检测 | FACS检测RAGE表面表达的时间点;Western blot和qPCR检测总蛋白和mRNA;抑制剂(dynasore、PD168393、SB203580)浓度 阅读提示:Results: RAGE signaling activation; Figures 3-6 |
| 过继转移实验 | 供体细胞(AMs、BMDMs)的分离、标记(APC)、细胞数量、注射途径;内源性巨噬细胞清除方案;转移后等待时间 阅读提示:Results: RAGE signaling; Methods: Adoptive macrophage transfer |