SAE模型建立与验证
建立SAE小鼠模型并验证认知功能障碍与海马CCK和兴奋性突触减少相关
对小鼠腹腔注射5 mg/kg LPS建立SAE模型,通过血清细胞因子检测、脓毒症评分、体重、恐惧条件反射和Morris水迷宫评估模型;检测海马CCK和突触蛋白水平。
Cholecystokinin ameliorates cognitive impairment via inhibiting microglia phagocytosis of excitatory synapses in sepsis-associated encephalopathy mice
包含体外BV2细胞模型、体内小鼠模型、行为学测试、电生理记录、RNA测序、免疫荧光及western blot等多个证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
SAE小鼠模型(LPS诱导) BV2小胶质细胞系 CCK-Cre转基因小鼠
LPS剂量:单次腹腔注射5 mg/kg LPS建立SAE模型 CCK8给药:海马CA1区注射10 ng或50 ng CCK8 CCK阳性神经元激活:化学遗传学(AAV2/9-DIO-hM3Dq-mCherry)结合CNO(5 mg/kg) CCK2R拮抗剂:L365,260(10 µM)验证受体机制 BV2细胞LPS刺激条件:1 µg/mL LPS处理6小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立SAE小鼠模型并验证认知功能障碍与海马CCK和兴奋性突触减少相关
对小鼠腹腔注射5 mg/kg LPS建立SAE模型,通过血清细胞因子检测、脓毒症评分、体重、恐惧条件反射和Morris水迷宫评估模型;检测海马CCK和突触蛋白水平。
评估海马CA1区注射CCK8能否改善SAE小鼠认知障碍
通过双侧套管向SAE小鼠海马CA1区注射不同剂量CCK8(2、10、50 ng),进行FCT和MWM测试。
验证CCK8是否改善SAE小鼠海马CA1区兴奋性突触数量与功能
通过Western blot检测PSD95和vGlut1水平,免疫荧光计数兴奋性突触,全细胞膜片钳记录sEPSCs和mEPSCs。
探索CCK8抑制C1q表达及其下游机制
利用RNA测序筛选差异基因,发现C1q下调;通过Western blot和qPCR验证C1q表达,免疫荧光检测小胶质细胞吞噬突触及A1极化。
验证内源性CCK释放是否同样改善认知功能并抑制C1q介导的突触吞噬
在CCK-Cre小鼠海马CA1区注射AAV-DIO-hM3Dq-mCherry,并用CNO激活,同时给予CCK2R拮抗剂L365,260,进行行为学、免疫荧光和Western blot检测。
在细胞水平确认CCK8抑制C1q的受体机制
用LPS刺激BV2细胞构建体外SAE模型,给予不同浓度CCK8及CCK1R/CCK2R拮抗剂,检测C1q蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| SAE模型建立 | 大肠杆菌O55:B5脂多糖 | Sigma-Aldrich | L2880 |
| 药物处理 | CCK8 | Tocris | 1166 |
| L365,260 | Tocris | 2767 | |
| SR27897 | Tocris | 2190 | |
| 化学遗传 | 氯氮平N-氧化物 | -- | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | C11995500BT |
| 胎牛血清 | Gibco | 10270106 | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 蛋白质提取 | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 蛋白酶抑制剂 | Applygen | P1265 | |
| 磷酸酶抑制剂 | Applygen | P1260 | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Applygen | P1511 |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 |
| 牛血清白蛋白V | Solarbio | A8020 | |
| 化学发光试剂 | TianGen | PA112-02 | |
| 抗体孵育 | 抗CCK-8抗体 | Immunostar | 20078 |
| 抗C3抗体 | Proteintech | 21337-1-AP | |
| 抗GFAP抗体 | Boster | BM0055 | |
| 抗PSD95抗体 | Cell Signaling Technology | 36233 | |
| 抗vGlut1抗体 | Abcam | ab227805 | |
| 抗C1q抗体 | Abcam | ab182451 | |
| 抗β-actin抗体 | Proteintech | 81115-1-RR | |
| RNA提取 | RNA提取试剂盒 | TianGen | DP419 |
| RNA-seq | RNA文库制备试剂盒 | TianGen | NR102 |
| HiSeq测序平台 | Illumina | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | TianGen | DP424 |
| qPCR | FastKing第一链cDNA合成试剂盒 | TianGen | KR116 |
| SYBR Green qPCR预混液 | TianGen | FP209 | |
| ELISA | CCK ELISA试剂盒 | RayBiotech | EIAM-CCK-1 |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Boster | EK0527 | |
| IL-1β ELISA试剂盒 | Boster | EK0394 | |
| IL-6 ELISA试剂盒 | Boster | EK0411 | |
| IL-10 ELISA试剂盒 | Boster | EK0417 | |
| MCP-1 ELISA试剂盒 | Boster | EK0568 | |
| 免疫荧光 | 抗c-Fos抗体 | Cell Signaling Technology | #2250 |
| 抗GFAP(鸡源)抗体 | Abcam | ab4674 | |
| 抗Iba1抗体 | Wako | 019-19741 | |
| 抗Iba1(鸡源)抗体 | HUABIO | HA601376 | |
| DAPI | -- | -- | |
| 电生理 | 印防己毒素 | -- | -- |
| Axonpatch 700B放大器 | Molecular Devices | -- | |
| Digidata 1500B数模转换器 | Molecular Devices | -- | |
| pClamp 10软件 | Molecular Devices | -- | |
| 脑切片 | 振动切片机 | Leica | VT1200S |
| 免疫荧光 | 共聚焦荧光显微镜 | ZEISS | -- |
| 脑立体定位 | 套管 | RWD Life Science | -- |
| 化学遗传 | AAV2/9-Ef1α-DIO-hM3Dq-mCherry-WPREs | BrianVTA | PT-0042 |
| 免疫荧光 | 冷冻切片机 | Leica | CM3050S |
| RNA-seq | 2100生物分析仪 | Agilent | -- |
| RNA浓度检测 | NanoDrop 2000 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 免疫荧光分析 | Imaris软件 | Oxford Instruments | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| SAE模型建立 | LPS剂量(5 mg/kg)、注射途径(腹腔)、小鼠品系和性别(3月龄雄性C57BL/6) 阅读提示:Methods: SAE mouse model |
| 行为学测试 | MWM和FCT的时间点(FCT第3天、MWM第4-7天)、测试参数(平台位置、电击强度等) 阅读提示:Methods: MWM, Fear conditioning test; 图1和图2图注 |
| CCK8注射 | 注射剂量(2/10/50 ng)、注射部位(海马CA1区)、注射时间(与LPS的相对时间) 阅读提示:Methods: Cannula implantation; 图2图注 |
| 化学遗传激活 | AAV病毒血清型和注射体积(100 nL)、CNO剂量(5 mg/kg)和注射时间 阅读提示:Methods: Cannula implantation and viral injection; 图5图注 |
| BV2细胞实验 | LPS浓度(1 µg/mL)和处理时间(6 h)、CCK8浓度(1 µM和2 µM)、拮抗剂浓度(L365,260和SR27897均为10 µM) 阅读提示:Methods: BV2 cell culture and treatment; 图6图注 |