上海富衡 | 小鼠胰岛β细胞株；Min6细胞

Min6细胞系概述

背景与来源：
Min6细胞是小鼠胰岛β细胞株，由日本科学家通过将胰岛素瘤（insulinoma）细胞与转基因小鼠（表达SV40大T抗原）杂交培育而成。该细胞保留了胰岛β细胞的核心功能，包括葡萄糖刺激的胰岛素分泌（GSIS），是研究2型糖尿病、胰岛素分泌机制和β细胞功能的常用模型。

Min6细胞的特点

1. 功能特性：
2. 胰岛素分泌：对葡萄糖浓度敏感（低糖基础分泌 vs. 高糖刺激分泌），可模拟生理性胰岛素释放。
3. 基因表达：表达β细胞标志物（如胰岛素、GLUT2、葡萄糖激酶等），但长期传代后可能逐渐丧失部分功能。
4. 极化性：贴壁生长，但细胞间连接较弱，需注意培养条件对功能的影响。
5. 局限性：
6. 永生化影响：与原代胰岛β细胞相比，Min6的胰岛素分泌能力较低，且对葡萄糖的敏感性可能随传代次数增加而下降。
7. 基因稳定性：长期培养易出现功能异质性，需定期检测胰岛素分泌能力。

培养条件与实验操作

1. 培养基：
2. 基础培养基：高糖DMEM（含25 mM葡萄糖）或RPMI-1640。
3. 添加物：15% 胎牛血清（FBS）、1% 青霉素-链霉素、55 μM β-巯基乙醇（保护细胞抗氧化应激）。
4. 培养环境：37°C、5% CO₂，湿度饱和。
5. 传代与冻存：
6. 传代比例：1:3至1:5（贴壁细胞，胰酶消化时间控制在2-3分钟）。
7. 冻存液：含10% DMSO的完全培养基，液氮长期保存。
8. 功能验证实验：
9. 葡萄糖刺激胰岛素分泌（GSIS）：低糖（2.8 mM葡萄糖）预处理1小时，换高糖（16.7 mM）刺激1小时，收集上清液检测胰岛素（ELISA或放射免疫法）。
10. 药物干预：常用药物如棕榈酸（模拟脂毒性）、IL-1β（炎症刺激）、格列本脲（K⁺通道抑制剂）等。

研究应用

1. 糖尿病机制研究：
2. 研究高糖/高脂诱导的β细胞功能障碍（如胰岛素分泌受损、氧化应激、内质网应激）。
3. 探索基因调控（如PDX1、FoxO1）对β细胞存活和功能的影响。
4. 药物开发：
5. 筛选改善胰岛素分泌或保护β细胞的化合物（如GLP-1类似物、SGLT2抑制剂）。
6. 评估抗氧化剂（如N-乙酰半胱氨酸）对β细胞凋亡的抑制作用。
7. 基因编辑与信号通路：
8. 通过CRISPR/Cas9敲除或过表达特定基因（如IRS2、SIRT1），研究其对胰岛素分泌通路（如PI3K/Akt、AMPK）的调控。

注意事项

1. 功能维持：
2. 使用低传代细胞（建议P5-P25），传代次数过多可能导致胰岛素分泌能力下降。
3. 定期检测胰岛素含量（细胞内）和分泌能力（细胞外），避免功能漂变。
4. 实验设计：
5. 设置严格的葡萄糖浓度梯度（如2.8 mM vs. 16.7 mM），并同步检测细胞活力（如CCK-8或Calcein-AM染色）。
6. 与原代小鼠胰岛或人体β细胞系（如EndoC-βH1）对比，验证实验结果的可信度。
7. 培养污染风险：
8. Min6对支原体敏感，需定期检测；避免与其他细胞交叉污染。

Min6细胞是研究胰岛β细胞功能的经典工具，其葡萄糖响应性和遗传可操作性为糖尿病研究提供了便利。然而，需注意其与原代细胞的差异，建议结合体内实验（如小鼠模型）和类器官技术，以更全面解析β细胞病理机制。