【干货】甲基化PCR检测、优化建议及优质分子酶的应用案例
人体中的单个基因(DNA 生物标志物)可能会在癌症存在时发生改变。能够在基因水平上识别这些修饰,为医生提供一种工具来帮助诊断癌症、评估癌症复发(转移)的风险,并预测个体患者对癌症治疗的可能反应。
导致癌症发生的基因突变之一是DNA甲基化,这是评估癌症的重要工具,甲基化DNA生物标志物几乎存在于所有恶性肿瘤中。

甲基化PCR
甲基化PCR(Methylation-Specific PCR, MSP) 是研究DNA甲基化最广泛使用的技术。这种简便、快速且特异的方法可用于检测CpG岛(DNA发生甲基化的位置)内几乎任何CpG位点组的DNA甲基化状态,且无需甲基化敏感的限制性酶。
此外,MSP仅需要少量DNA,并且可以高度灵敏地检测基因座特异性DNA甲基化(特定基因座中甲基化等位基因的检测水平 < 0.1%)。
甲基化PCR与普通PCR最大的不同在于它使用两个单独的PCR引物进行两个单独的PCR反应。
甲基化PCR的基本原理是亚硫酸氢盐转化的DNA的特异性PCR扩增。用NaHSO3处理基因组DNA将样本中未甲基化的胞嘧啶(unmethylated cytosine)转化为尿嘧啶,而甲基化的胞嘧啶(methylated cytosine)可以抵抗这种修饰并保持不变。然后,使用甲基化与未甲基化DNA特异性引物对亚硫酸氢盐转化的DNA进行PCR扩增,其中一组(引物 M)特异性结合甲基化序列,另一组(引物 U)仅与非甲基化序列结合(图1)。

在PCR扩增的特定退火温度下,两套引物组与模板结合的Tm值不同,因此,如果能用引物M来扩增片段,则检测到的位点是甲基化的;如果用引物U扩增该片段,则检测到的位点不存在甲基化。最后,通过凝胶电泳成像确定目标DNA序列的甲基化状态(图2)。值得注意的是,DNA带大小取决于启动子中存在的 CpG 数量。使用实时定量MSP可以高度准确地区分阳性和阴性结果。

图2. 甲基化PCR结果解读

图3. 不同甲基化PCR对比
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检测一个或多个基因靶标内CpG岛的甲基化状态
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高灵敏度检测位点特异性DNA甲基化
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适用于多种样品,如体液、石蜡包埋样品
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简单、快速且经济高效的技术
甲基化DNA PCR的应用前景:
甲基化标记可以作为癌症早期检测的生物标志物。例如,特定基因的甲基化状态在某些癌症(如乳腺癌、结直肠癌和肺癌)中发生显著变化,通过检测这些变化可以实现早期诊断。
不同癌症亚型具有不同的甲基化模式,通过分析这些模式可以预测疾病进展和患者预后,从而指导个性化治疗方案。
2. 药物敏感性预测和耐药性监测
一些基因的甲基化状态可以影响药物的代谢和效力。通过检测这些基因的甲基化状态,可以预测患者对特定药物的敏感性,从而优化治疗策略。
3. 遗传和表观遗传研究
甲基化PCR步骤及优化建议

优化建议:
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靶向基因启动子区域的CpG岛 -
CpG对DNA甲基化高度敏感。引物应位于基因CpG岛的侧翼,但避开边界 -
CpG边界会影响扩增效率,因此应避免使用 -
引物应位于转录起始位点(TSS) 附近。研究表明,TSS的1000bp上游和500bp下游区域是引物设计的良好选择 -
引物应有效区分甲基化和非甲基化序列 -
MS-PCR引物应比普通 PCR引物长。特别是包含富含AT的对应物的非甲基化引物。甲基化引物应较短,而非甲基化引物应较长 -
非甲基化引物的理想长度应在20-30个核苷酸之间 -
每个引物在3'端应至少包含一个富含CpG的互补区域,但是,两个引物应具有相同数量的CpG -
引物组的设计使得PCR产物不应超过300bp -
两个引物之间的Tm不应超过 5°C -
还需要注意的是,引物还应含有足够数量的非 CpG“C”核苷酸,以有效扩增亚硫酸氢盐转化的 DNA。
初设计MSP者最好用文献引物进行研究。如果是为了筛选新的甲基化的抑癌基因而文献中无法找到相应的MSP引物,可用在线MethPrimer软件在线设计引物( http://www.urogene.org/methprimer/indexl.html)。根据软件提示可以找到所需要的MSP引物。
MSP所遇到的困难是,要扩增的是启动子或部分第一外显子序列,其(C+G)含量相对较高,MSP扩增难度加大,因此设计好的引物最好用引物软件如 Primer5.0从理论上推测其扩增效率,对于扩增效率小于30%的引物要进行优化,方法是在核心启动子区域前后反复调整甲基化正向引物打增起始点,以期使引物扩增效率增高,降低扩增难度,从而提高PCR产量。
2. DNA的NaHSO3修饰
④ DNA模板量:应控制在2μg为宜
3. MSP反应体系
MSP的反应体系的成分与普通PCR一样 ,反应体系的优化也与普通PCR类似,最大的区别是DNA模板不同。
① 模板纯度: 经过修饰后的模板为单链状态,因此MSP的DNA模板在提取后应检测其纯度和含量,其纯度要求A260/A280在 1.8~2.0之间
② 模板含量: 含量要准确检测,否则在亚硫酸盐处理时因DNA模板加得太多而导致DNA处理不完全致使MSP扩增失败;DNA模板太少则一方面浪费试剂,另一方面会因为目的片段太少导致MSP假阴性
③ Mg浓度:2.0~2.5 mmol/L 为宜
4. 凝胶电泳分析
MSP 扩增结果出现3种情况:① 产物电泳为阴性;② 产物电泳出现多条非特异性条带(含目的基因条带);③ 产物电泳为阳性(仅目的基因条带)。
出现前2种情况时,可在保证反应体系和引物没有问题的情况下,通过调整MSP的反应温度而得到目的基因带。
迈迪安分子酶/预混液在甲基化PCR的优异应用
1. 针对亚硫酸氢盐处理的样本
经过对提从血液中提取的DNA进行亚硫酸氢盐处理后,对一组不同程度(1%、2%、5%和10%)的人体甲基化DNA样本进行检测,使用迈迪安可风干血液直扩qPCR预混液MDX092进行qPCR检测以对其区分不同甲基化水平能力的灵敏度进行评估。
*brcal qPCR检测是专门针对brcal启动子区域甲基化的亚硫酸氢盐转换序列的扩增。
使用MDX092分别为2000,200和20个拷贝的人体基因组样本进行brcal qPCR扩增, 扩增曲线可以清楚地区分1-10%甲基化(图4)。
与对比试剂Q相比,MDX092的可检测模板浓度低5个数量级(图5)。

图4. brca1的甲基化水平区分。MDX092可以明确区分1%,2%,5%和10%甲基化,并且可以检测低至1拷贝 (e.g. 从20个拷贝中模板检测出5%甲基化DNA)。

图5.与专用甲基化检测的预混液Q进行性能比较。
2. 针对MSRE处理样本处理的样本
使用甲基化依赖酶(仅切割甲基化DNA)或甲基化敏感酶(仅切割未甲基化的DNA)也可作为亚硫酸氢盐处理的替代方法以确定甲基化水平。

图6.MDX092-MSRE检测。人体gDNA经过Lpn I和Ssi I (Aci I)限制消化处理后在80℃热灭活20 min,取5 μl直接加入20 μl qPCR反应进行brcal qPCR检测。


图7.Taq HS Polymerase MDX008对超甲基化DNA的高效扩增
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