做了一次，因为我的细胞增殖速度很慢，培养24h基本没有增殖。所以我铺板的细胞密度挺大的，每孔undefined10五次。铺板后第二天换低血清培

cck8实验做了一次，因为我的细胞增殖速度很慢，培养24h基本没有增殖。所以我铺板的细胞密度挺大的，每孔undefined10五次。铺板后第二天换低血清培养基，1%浓度，饥饿培养24h。第三天，配好药物浓度梯度，加药。培养24h。第四天，因为我的药物是重金属离子，跟CCK8会有强烈的反应，我就先把原培养液吸出，很小心的尽力吸干净，我没有用PBS冲洗，因为我怕冲洗会冲洗掉细胞。接着加入100ul培养基每孔，再加入10ulCCK8每孔。孵育后半个小时，1个小时，2小时，4小时都在酶标仪上检测了。

我的第一个问题是：我的药物是致细胞凋亡的，有没有饥饿培养的必要呢？

第二个问题是：我的检测结果正常组OD值在0.5~0.4之间，加药组最低0.29，空白（只有培养基和CCK8）是0.27左右。这样的实验结果可信么？OD值范围是多少比较合适呢？必须要做OD和细胞数的标准曲线么？