请问怎么查看th0活化成功与否？

包板前细胞需要清洗干净，按照抗体说明书推荐剂量进行包板，第一次坐可以做一个高浓度，一个低浓度，诱导前需要加诱导因子，诱导成功的关键在于细胞状态要好

一般需要在37度恒温培养箱中包被两个小时，包被好之后吸取液体，然后再进行细胞种板。细胞培养板来说，没有特殊要求（一般的培养板都会有抗体的附着点）。在加入CD3，CD28之后，你是否有加入相应的细胞因子进行刺激呢？比如诱导th2方向，需要添加IL4进行刺激。同时，培养淋巴细胞最好还是要加入IL2，保证细胞活性。

在进行包板过程时，需要注意以下几点：

充分洗涤酶解过的包板：在使用新的包板之前，需要充分洗涤酶解过的包板，以去除任何可能存在的残留物质，防止对实验产生影响。

确保包板浓度正确：包板浓度过高或过低都会影响细胞的激活，一般建议使用厂家推荐的浓度。在使用时，可以根据实验需要进行优化和调整。

培养板质量问题：细胞培养板的质量也可能影响细胞的激活和诱导分化。建议使用无菌、无毒、无蛋白质吸附的高质量细胞培养板，并在使用前进行灭菌处理。

培养条件：在进行包板实验时，需要确保细胞处于适宜的培养条件下。比如，细胞需要在恒温、恒湿、含有适宜气氛的培养箱内培养，以保证最佳生长和活性状态。

此外，对于Th17细胞的诱导分化实验，还需要注意以下几点：

需要添加适当的细胞因子：Th17细胞的诱导分化需要适当的细胞因子，比如IL-6、TGF-β等。在进行实验时，需要根据实验设计和细胞类型添加适当的细胞因子。

合理的细胞密度：细胞密度对于Th17细胞的诱导分化也非常重要。一般建议细胞密度控制在1-2 x 10^6/mL左右。

注意细胞的净化和纯化：在进行Th17细胞的诱导分化实验前，需要对细胞进行充分的净化和纯化，以去除任何可能影响实验结果的干扰物质。

你诱导失败的原因考虑是抗体浓度不合适，我一般使用10ug/ml的抗体进行诱导