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电泳:80V+120V跑的
转膜时间:200mA,70min(三明治,5层滤纸)
膜活化:PVDF膜甲醇几分钟,然后转膜液里面泡了30s放在滤纸上
封闭:5%牛奶
一抗:1:40000,2%牛奶,过夜
二抗:1:25000,2%牛奶,1h
问题:胶凝得不好,孔里残胶+分离胶浓缩胶分界处有纵向纹路;电泳仪漏(夹板中间漏,液体加到中间满)
结果:有marker但是无蛋白
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电泳液漏的几点建议:
①与供应商协商,提供低颜基比涂料,以便调整槽液。
②加强前处理液的过滤,降低磷化液的残渣含量,严格控制磷化后冲洗的水质,以及浮在工件表面上的磷化残渣;定时清洗挂具疏松污垢等。
③加强电泳槽液的过滤。定期清洗、更换过滤装置,严格控制槽液的PH值和碱性物质的带入,防止树脂析出。
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可能目的蛋白没有表达出来,虽然PAGE胶上有蛋白
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分析及建议如下:
1.胶凝固不良可能是APS过量或TEMED比例不足导致,优化配胶条件。界面的纵向纹路也提示凝胶问题。
2.电泳仪漏液会造成泳道不均匀,需要检查并修复仪器。
3.转膜条件影响较小,按现有参数即可。
4.没有条带显示可能是一抗问题,需要重新优化一抗的工作浓度。现用1:40000可能过高,降低稀释度。
5.提高一抗结合效果,可考虑漂晚3-5%BSA封闭,延长一抗孵育时间等。
6.同时建议做内参如GAPDH来确定问题出在目标蛋白而不是方法本身。
7.其它各步骤如洗膜、显色等条件也需核查是否合适。
8.重复试验,同时准备阳性对照可排除操作问题。
综上,优先从配胶条件和一抗效果两个方面着手优化,其他环节也需要逐一检查。希望这些建议可以提供帮助,也祝实验顺利!
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