磷酸化蛋白一定需要诱导吗？是否有具体例子或者基线表达或诱导方法的综述？

不说一定，很多情况下蛋白磷酸化是比较低的，需各种手段去刺激磷酸化表达。

具体例子或综述很多，你去知网一查就能看到这里就不好打广告了

一般蛋白磷酸化要么是发挥了作用，要么是失活了。这个要看你具体要做什么，才能有针对性的说。基线一般可以理解为总的你那个蛋白。文献你可以参考：蛋白质磷酸化与基因转录的调节。

磷酸化可能需要被诱导。信号弱或无信号可能意味着诱导不充分。建议使用推荐的阳性对照。

研究磷酸化时，请记得向裂解液中加入磷酸酶抑制剂

向含有 1-100 ng 靶蛋白（500 µg 裂解物）的蛋白样品中加入等体积的 2x SDS-PAGE 样品缓冲液。对于还原样品，样品缓冲液中应该同时加入 DTT 或 β-巯基乙醇。对于非还原样品，不加入 DTT 或β-巯基乙醇。

将样品加热到 95 °C 或煮沸 5 分钟，使蛋白变性。

上样并在标准条件下跑胶。

通过半干法或湿法将蛋白转印至 PVDF 膜上。请注意：PVDF 膜必须预先在甲醇溶液中湿润后。

如有需要，可以在丽春红染料中对膜进行简单地（10 秒）染色，以确定转膜效率。可以用 PBST 或 TBST 清洗去除染料。我们不建议在蒸馏水中清洗，因为某些情况下可能会使蛋白质脱落下来。

在 TBST 中加入 5% w/v BSA 对膜进行封闭。在摇床上 4 °C 孵育 1 小时。

使用 TBST 稀释一抗至建议稀释度。我们推荐在封闭的袋子、杂交管或 50 mL Falcon 管（约 2.5 mL缓冲液）中进行孵育。在摇床上 4 °C孵育过夜。

室温下使用 TBST 洗膜 3 至 4 次，每次 5 分钟。

在 TBST 中，按照建议的稀释度（虽然需要对特定应用进行优化，1/5000 是较好的通用工作稀释度）稀释 HRP 二抗。

室温下使用 TBST洗膜 3 至 4 次，每次 5 分钟。

进行 ECL Plus 检测。

使蛋白保持在磷酸化的状态！加入充足的磷酸酶抑制剂，并始终将样品置于冰上。

使用 5% w/v BSA (fractionV) 而非牛奶（牛奶中包含的酪蛋白是一种磷酸化蛋白；而抗体会检测牛奶中的酪蛋白导致高背景）封闭膜。