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        细胞介导细胞毒作用检测法2:[3H]脱氧胸苷释放法

        互联网

        1413

         

        [3 H] 脱氧胸苷释放法

         

        1 )标记靶细胞

         

        1. 用含 5 %小牛血清的 RPMI-1640 培养液将靶细胞配成 2 × 106 /ml ,取 10 μ Ci 370kBq [3 H]TdR 加到 1ml 靶细胞中, 37 ℃水浴标记 4 6 小时,每 30 分钟摇晃一次。

        2. RPMI-1640 培养液洗涤细胞 3 次,每次 400 × g 10 分钟。用含 5 %小牛血清的 RPMI-1640 培养液将细胞浓度调整为 1 × 105 /ml 备用。

         

         

        2 [3 H]TdR 释放实验

         

        1. 96 孔圆底细胞培养板中加入标记的靶细胞,每孔加 100 μ l (含 1 × 104 细胞)。

        2. 向各孔加 100 μ l 效应细胞,效应细胞与靶细胞比例根据要求而定,通常为 5 1 20 1 。阴性对照孔不加效应细胞只加 100 μ l RPMI-1640 培养液。阳性对照孔中加 100 μ l 1 NP40 。每个实验置三个复孔。

        3. 37 5 CO2 的二氧化碳培养箱培养 18 小时。

        4. 离心培养板 200 × g 10 分钟,从每孔中吸出 150 μ l 上清液。每孔加 150 μ l 1mg/ml 胰蛋白酶和 10 μ g/ml DNA 酶的 Hanks 液,在 37 5 CO2 的二氧化碳培养箱中继续培养 30 分钟。

        5. 稍振荡后离心沉淀细胞。每孔吸出 100 μ l 上清液置液闪瓶中。

        6. 每孔加 100 μ l 5 %三氯醋酸,用多头细胞收集器将细胞收集到玻璃纤维滤纸上,用 5 %三氯醋酸洗滤纸 3 次,将滤纸置液闪瓶中。

        7. 在液闪计数仪上分别测定上清液中细胞中的每分钟放射性活性( cpm 值)。上清液 cpm × 2 是死细胞释放的 cpm ;细胞 cpm +上清液 cpm × 2 代表总 cpm

        杀伤活性(%)= [ (上清液 cpm × 2 / (细胞 cpm +上清液 cpm × 2 ] × 100

         

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