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        凝胶过滤实验方法

        互联网

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        1.凝胶的选择

        根据层析物质分子量的大小选择不同型号的凝胶,如除盐和除游离的荧光素,则可选用粗、中粒度的G25或G50,G250多用于分离蛋白质单体,G200多用于分离蛋白质凝胶聚合体等。

        2.凝胶的预处理

        称取适量的凝胶加入过量的缓冲液在冰箱(或室温)中充分膨胀,或在沸水中煮,膨胀时间应根据不同型号的凝胶而定。

        凝胶量与型号和层析柱大小与规格及凝胶用量

        层析柱规格& @- q1 P( c' ~undefined d
        凝胶的规格和用量(g)
        直径(cm)高(cm)容量(ml)& L) Q+ ^/ `" iG251 g. l% A5 @& s4 m" _0 ~undefined CG50, k3 L) X! ?% Y- _. ~undefined A; fG1000 K" k" G" q. ?: W+ ~ nG200
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        为使粒子均匀一致需进行浮选,即加入凝胶粒子后,轻轻搅拌,静置20min,倾去沉淀的粒子,如此反复数次即可。

        3.装柱

        层析柱的选择一般根据分离样品的种类和样品的数量而定。纯化蛋白质时,柱床体积应为样品体积的25~100倍。去盐、游离荧光素约为样品体积的4~10倍。柱太短,影响分离效果。柱长一些,分离效果好,但柱太长,则延长分离时间,样品也稀释过度。

        层析柱的内径也要选择适当。内径过细,会发生“器壁效应”,即靠近管壁的流速要大于中心的流速影响分离效果。所以层析柱的内径和高度应有一定的比例。对于除盐来说应为1:5~1:25;对于纯化蛋白质来说应为1:20~1:100。

        4.加样与洗脱

        样品体积不宜过多,最好为床体积的1%~5%,最多不要超过10%。样品浓度也不宜过大,浓度过大粘度大,分离效果差,一般不超过4%。

        洗脱液应与膨胀一致,否则更换溶剂,凝胶体积会发生变化,影响分离效果。洗脱液要有一定的离子强度和pH值。分离血清蛋白常用0.02~0.1Mol/LpH6.9~8.0的PBS液(0.14Mol/LNaCl)和0.1Mol/LpH8.0Tris-HCl缓冲盐溶液(0.14Mol/LNaCl)。

        5.洗脱液收集

        利用自动分步收集器收集,并以20%磺基水杨酸测试,当蛋白液下来时,开始分管收集,至无蛋白液为止。

        6.凝胶柱的重复使用与保存

        当样品的各组分全部洗脱下来之后,即可加入新的样品,继续使用。保存方法有三种:

        (1)在液相中保存最方便,即于凝胶悬液中加入防腐剂(如0.002%洗必泰)或高压灭菌后4℃保存。此法至少可以保存半年以上。

        (2)用完后,以水冲洗,然后用60%~70%酒精液冲洗,凝胶体积缩小,即在半收缩状态下保存。

        (3)长期不用者,最好以干燥状态保存,即水洗净后,用含乙醇的水洗,逐渐加大乙醇用量,最后用95%的乙醇洗,可全部去水,再用乙烯去除乙醇,抽滤干,于60℃~80℃干燥后保存。加乙醇时,切忌一上来就用浓乙醇处理,以防结块。

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