实验动物基本操作

方法一 用导管室报废的6F导管最前端，约7～8厘米。插管时左手拉紧大鼠舌头，右手持导管（凹面向上，有白色的一端向前），顺着导管弧度，紧贴上颚后边一直向前，就可以插进气管。很容易插到食管内。多练习找一下感觉，多总结失败的原因，一定会成功的。 方法二 用医院内用的16号套管针，将前面尖的部分剪掉一些，然后将老鼠绑在鼠板上，将板头侧抬高45～60度，然后用灯照在鼠颈部，用左手将老鼠的舌头拉向左侧，就可以 ...

我们实验使用的一般就是最常见的杂种狗，也就是动物中心从市面收购来的，据说其中很多是捕狗能手从广大农村打来的野狗。其带菌和免疫情况我们一无所知，所以请千万不要被咬到，否则就赶快打狂犬病疫苗吧。 看文献偶尔会提到比格犬，恐怕国内没有什么人能够有此好运使用这么高档的动物。 狗是我们常用的大型动物中性情最凶猛的，尤其是我们做急性实验很快就处死，因此不会建立良好的感情和协作关系。 杂种狗，雌雄不拘，一般文献 ...

首先一点，反对腹腔内给予麻醉药物，因为经验证明那样做效果非常差，有的时候给药剂量非常大而且等待一两个小时了动物还很精神。 绵羊比较温顺，一般体重在30公斤左右。 我们是拿绳子绑在它脖子上牵回实验室，然后普通安定10毫克，东莨菪碱0.3毫克肌注。羊对这些药物的反应性很好，一般10多分钟后就比较安静，在实验室走动一会就趴下休息了。我们正好可以利用这个时间准备试验所需的物品。 然后将羊绑在试验台上，进行 ...

方案一 猪的体重选择最好低于35kg，否则很难插管。 先肌肉注射氯胺酮6mg/kg+安定0.2mg/kg，基础麻醉（由于个体差异比较大，在此基础上，可以再追加ketamine），同时肌肉注射hyosine0.3mg，猪的口咽分泌物比较多！ 由于个体差异比较大，在此基础上，可以再追加ketamine。 然后抬到手术台固定，耳源静脉穿刺放置静脉套管（18~20G）。采用安定0.2mg/kg+芬太尼10 ...

1、全身麻醉 （1）吸入法 用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用乙醚作麻药。麻醉时用几个棉球，将乙醚倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4～6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时给套在鼻上使其补吸麻药。本法最适于大、小鼠的短期操作性实验的麻醉，当然也可用于较大的动物只是要求有麻醉口罩或较大 ...

（一）使用挥发性麻醉药 1、乙醚、吗啡合并麻醉方法 乙醚麻醉的优点：深度易于掌握，比较安全，麻醉后恢复比较快。 缺点：需要专人管理，麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道有较强的刺激性，需在麻醉前给一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉）。 通常在麻醉前20～30分钟，皮下注射盐酸吗啡或硫酸吗啡（每公斤体重5～10毫克）及阿托品（每公斤体重0．1 mg） 2．氯仿、乙醚合并麻醉方法 氯仿作吸入麻醉药，其麻醉 ...

实验动物的麻醉是一项复杂系统的工作。正确的麻醉处理，是动物实验成功的有力保障。而麻醉处理不当，会给实验结果带来难以分析的误差。要想获得良好的麻醉效果，除掌握实验动物麻醉的基本知识和技术、遵循科学的麻醉程序外，还应了解影响实验动物麻醉的各种因素，如动物因素、环境因素等。 1、动物因素 1、1年龄和体重 动物对药物的反应随年龄的不同而有差异。有人将大鼠、小鼠按年龄分成幼年、成年、和老年3组 ...

1、乙醚 乙醚吸入法是最常用的麻醉方法各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此 ...

当实验进行中因麻醉过量、大失血、过强的创伤、窒息等各种原因，而使动物血压急剧下降甚至测不到。呼吸极慢而夫规则甚至呼吸停止、角膜反射消失等临床死亡症状时，应立即进行急救。 急救的方法可根据动物情况而定。对狗、兔、猫常用的急救措施有下面几种。 （一）针刺 针刺人中穴对挽救家兔效果较好。对狗用每分钟几百次频率的脉冲电刺激膈神经效果较好。 （二）注射强心剂 可以静脉注射0.1%肾上腺素1ml，必要时直接作 ...

股动脉和股静脉插管方法如下： 1、动物背位固定于兔台上，腹股沟部剪毛。 2、用手指触摸股动脉搏动，辨明动脉走向，在该处作局部麻醉并作方向一致长约4～5cm的切口。用止血钳小心分离肌肉及深部筋膜，便清楚地暴露出股三角区。骨三角区上界为鼠蹊韧带，内界为缝匠肌，外界为内收长肌。肌动脉及神经即由此三角区通过。股神经位于外侧，股静脉位于内侧，肌动脉位于中间偏后。 3、用止血钳细心将股神经首先分出，然后分离股 ...

1、温水急救法 将４０℃左右的温水倒入盆内，把受冻的仔兔全身浸泡在水中，仅露出鼻孔用来呼吸。然后用手轻轻地托起仔兔的头部，在温水中慢慢地晃动，经过１０～２０分钟，当仔兔开始蠕动时，将仔兔提出水面，把全身的水轻轻地擦干，用柔软的棉絮把仔兔包裹起来，放回到原来的产仔箱内。 2、毛巾包裹取暖法 用干净、柔软的毛巾将受冻的仔兔包裹好，只露出头部，然后把包裹好的仔兔放在炉火旁或装有温水的热水袋上，不断地翻动 ...

建议： 1、断头放血处死，无需麻醉，最方便。所用器械铡刀或大剪刀，操作熟练者1人足以，生手需2人配合。 优点：简便易行。 缺点：所采血样容易发生溶血，且采血量较少，约3～5ml/只。 2、颈总动脉或腹主动脉放血处死，需8%乌拉坦或3%戊巴比妥钠麻醉。 优点：A、放血彻底；B、1次可采6～8ml/只血样； 缺点：耗时较多。 3、眼球放血处死，无需麻醉， 优点：简便易行。 缺点：所采血样容易发生溶血， ...

分离表皮细胞，需要新生鼠的皮肤全层。 不知道有血会不会有影响。用乙醚试试？不会出血 方法一 一般用酒精擦拭全身以后，直接用剪刀断头处死，滴尽体内血，用棉球擦干净颈部血，然后大头针固定就好了，不到一分钟就行了，而且不会影响细胞的活力，也没有应激反应。 方法二 既然是要分离细胞要注意无菌操作 1、对乳鼠进行消毒：将乳鼠浸泡在75%的酒精中片刻，或用酒精擦拭乳鼠全身。 2、处死和放血：用 ...

安乐死（euthanasis）是指公众认可的，以人道注意的方法处死动物的过程，国际上竭力建议，在实施任何安乐死之前，无论是对犬和猫，还是对如大家畜。都应使用镇静剂。那么安乐死的方法具体有那些？对于不同动物的具体方法怎样？安乐死有没有必要在小型实验动物中使用？ 一、适用安乐死方法 （一）一般常用脊椎动物 1、小于125g啮齿动物 a二氧化碳；Barbiturate 注射液，静脉注射（100mg/kg ...

（一）狗、猫、兔、豚鼠 1、空气栓塞法 向动物静脉内注入一定量的空气，使之发生栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进入肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状动脉，造成冠状动脉阻塞，发生严重的血液循环障碍，动物很快致死。 2、急性失血法 3、破坏延脑法 用器具破坏延脑或用木锤用力击其后脑部。 4、开放性气胸法 将动物开胸，造成开放性气胸 ...

实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。 安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。 处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死亡，通过对呼吸、心跳、瞳孔、神经反射等指征的观察，对死亡作出综合判断；再者要注意环保，避免污染环 ...

实验动物的给药容积1、口服法 口服法给药很难准确掌握给药量，另外室温下易分解物质的给药，小量被检物质的给药，都很难准确平均填加。 2、灌胃法 各种动物一次灌胃能耐受的最大容积如下： a小鼠 A体重（g）>30 最大容积（ml）1.0；　　B体重（g）25～30 最大容积（ml）0.8；　　C体重（g）20～24 最大容积（ml）0.5； b大鼠 A体重（g）>300 最大容积（ml）8 ...

一、新的颅内给药方法 血药屏障（brain blood barrier．bbb）的存在，使很多药物不能进入脑部，限制了脑部疾病的治疗。 通过鼻腔向脑输送药物：雌二醇、多巴胺、孕酮、神经生长因子等，通过鼻腔给药直接进入脑脊液。 也许这种方法不新鲜，但似乎临床应用较少。方法不够好，南京总医院的刘新峰在国外的研究，是一个很有前途的方法。刘新峰研究了NGF通过鼻腔给药，其脑内前额、海马区较同样剂量的直接静 ...

一、大鼠灌胃 大鼠灌胃是最常见的给药方法之一。灌胃所用的针头可以从市场上购买，操作方法和小鼠灌胃大同小异，只是由于大鼠体积较大，抓大鼠的手法和小鼠有所不同。 大鼠灌胃是在清醒状态下进行的，不需要麻醉。大鼠的灌胃针长约6～8cm，直径约1.2mm。 大鼠灌胃时，右手持灌胃注射器，左手拇指和食中二指相对，抓住大鼠颈部皮肤，使大鼠的头部和颈部及躯干呈一直线，不需要固定大鼠的尾巴，就可以实施灌胃操作了，其 ...

１．选择那种动物比较好？ 用Beagle犬比较多 ２．怎么实验动物给药？ 方法是使狗的嘴张开并固定，头稍抬起，用镊子把胶囊或是片子放在舌后部，倒少量的水，如果是胶囊水不能太多否则胶囊会漂起来，然后动作快点放开固定，Beagle犬很温顺一般不会有什么问题 。 口服制剂用兔子的也比较多，但一般需要将药物粉碎后灌胃，肠溶制剂不合适 。 ...