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        荧光定量聚合酶链式反应检测可溶性细胞因子

        相关实验:细胞因子检测

        最新修订时间:

        简介

        荧光定量 PCR 技术, 是指在 PCR 反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号的变化实时检测 PCR 扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,通过 Ct 值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析。

        原理

        荧光定量聚合酶链式反应检测可溶性细胞因子的基本原理是利用 SYBR Green I-荧光定量 PCR 最常用的 DNA 结合染料,与双链 DNA 非特异性结合。在游离状态下,SYBR Green I 发出微弱的荧光,一旦与双链 DNA 结合,其荧光增加 1000 倍。所以,一个反应发出的全部荧光信号与出现的双链 DNA 量呈正比,且随扩增产物的增加而增加。

        用途

        双链 DNA 结合染料实验设计简单, 仅需要 2 个引物,不需要设计探针,且能够进行熔点曲线分析,成本低,通用性好,在科研中使用比较普遍。

        材料与仪器

        器材:PCR 仪,移液器。

        试剂:


        ① 1 x PCR Buffer
        ② 0.3-0.5pmol/μl 的引物
        ③ 0.1-0.3pmol/μl 的探针
        ④ 2.5-4.OmM 的 Mg2+
        ⑤ 1-2U 的 Taq 酶
        ⑥ 0.2-0.4 mM 的 dNTPs
        ⑦ 0.2-1.0U 的 UNG 酶
        ⑧ 0.3-0.6 mM dUTP

        步骤

        (一) 基因序列的査找

        大量阅读相关的背景资料后,根据自己所要研究的基因名称,在 genebank 中找到相应的基因序列(www.ncbi.nlm.nih.gov)。用引物设计软件 Primer 5.0、o1igo 6.0 或 Beacon Designs 3.0 进行引物探针的设计(该软件可在 www.shinegene.org.cn 下载)

        (二) 引物设计通常遵守的原则

        ①引物与模板的序列要紧密互补;
        ②引物与引物之间避免形成稳定的二聚体或发夹结构;
        ③引物不能在模板的非目的位点引发 DNA 聚合反应(即错配);
        ④引物长度通常在 20-25bp,Tm 值在 55℃-65℃,GC 含量在 40%-60%,产物大小在 100-250bp 之间;
        ⑤引物的 3』端避免使用碱基 A,避免出现 3 个以上连续相同的碱基;
        ⑥为避免基因组的扩增,引物设计最好能跨两个外显子。

        探针设计通常遵守如下原则:

        ①探针位置尽可能地靠近上游引物;
        ②探针长度通常在 20-30bp,Tm 值在 65℃-70℃,通常比引物高 5℃-10℃,GC 含量在 40%-70%;
        ③探针的 5』端应避免使用碱基 G;

        ④整条探针中,碱基 C 的含量要明显高于 G 的含量。


        (三) 为确保引物探针的特异性

        最好将设计好的序列在 blast 中核实一次,如果发现有非特异性互补区,建议重新设计引物探针。

        (四) 根据仪器特点和个人的喜好选择标记的荧光素种类

        如 FAM、Texas red、LC-Red640、LC-Red705 等,同时确定荧光定量 PCR 的方法,选择 Taqman 或 beacon 等,可参考前面所述。

        (五) 选择高品质的引物探针合成商,如 TaKaRa 等。

        (六) 三种外标准品的制备形式

        ①化学合成目的基因,它的优点是纯度高、定量准确,缺点是受化学合成工艺的限制,只能合成 120bp 以下的长度;

        ②将 PCR 扩增产物直接梯度稀释, 它的优点是方便、简单,缺点是不准确、不稳定;

        ③将 PCR 产物克隆到载体上,然后抽提出质粒,经过测量浓度和拷贝数的换算,进行定量,优点是稳定、准确。

        (七) 引物探针的保存合成好的引物探针

        最好用双蒸水稀释成 25pmol/μl 的浓度,然后放-20℃ 保存,还应该注意避光保存探针。

        (八)PCR 反应液的配制

        1xPCR Buffer、0.3-0.5pmol/μl 的引物、0.1-0.3pmol/μl 的探针、2.5-4.OmM 的 Mg2+、1-2U 的 Taq 酶、0.2-0.4 mM 的 dNTPs、O.2-1.0U 的 UNG 酶、0.3-0.6 mM dUTP、通常取 2-5μl 的模板,反应总体积通常为 20-50μl(以上所有的浓度都是指终浓度)。

        (九)PCR 扩增程序的设定

        通常是先 50℃,2 min,93℃,5s, 然后 93℃,20s,60℃,30s,循环 40 次,在 60℃ 时,设定荧光检测点。

        (十) 阴性对照设定

        为确保实验数据的有效性,每次实验都设阴性对照和 4 个标准品,每个样品都平行做 2 个复孔。

        (十一) 基线或阀值的设定

        通常是以 10-15 个循环的荧光值作为阀值,也可以以阴性对照荧光值的最高点作为基线

        注意事项

        1. 文献上引物和探针序列的使用问题。

        通常国外的文献可信度比较高,可直接使用;但为了保险起见,最好用 blast 对引物探针的序列进行必要的验证;或者用 primer 软件对引物探针的二级结构和退火温度进行分析,这样更有利于对整个实验的把握。

        2. 在实验之前的准备工作。

        首先要不加探针做常规的 PCR 实验,验证引物是否工作、模板是否降解、模板纯度是否合适,同时确定实验的最佳反应体系和反应条件。

        3. 标本的釆集和处理的注意事项。

        根据实验要求和目的,有针对性采集病灶部位的标本;采集好的标本,最好根据每次实验用量, 用冻存管分成几小份,放在-80℃ 保存,以免反复冻融;标本通常分成 3 类 (细胞组织、分泌物、血清全血);如果是血清,不能有融血现象的发生,否则会影响 PCR 的扩增;如果是全血,最好不用 EDTA 作为抗凝剂,选用柠檬酸作为抗凝剂,否则会影响 PCR 的扩增;如果是组织,最好用蛋白酶 K 消化;如果是提 RNA 的标本, 更应该防止反复冻融和保持标本的新鲜。

        4. 荧光定量实验操作的注意事项。

        在操作中,应使用不含荧光物质的一次性手套、一次性移液器吸头 (带滤嘴自卸式),不能用手直接触摸离心管底部。在试剂准备和标本处理时应使用超净工作台 (负压式) 或防污染罩,以防止对环境的污染。操作台、移液器、离心机、PCR 扩增仪等仪器设备应经常用 10% 次氯酸或 75% 乙醇擦拭消毒。每次实验前后用 10% 次氯酸和 70% 乙醇擦拭移液器、操作台。实验中涉及的有害有毒的标本及试剂应妥善放置、专人保管, 废弃物应置专门容器中妥善处理。荧光探针应避光保存,加入反应液中后, 应尽快配制好反应体系进行扩增。配制反应体系时,应注意移液器的使用方法,所有的液体都要缓慢加至管底,不要加至管壁,所有液体的混匀要用振荡器进行,不能用移液器吹打,反应体系配制完毕后低速离心数秒,避免产生气泡。

        来源:丁香实验

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