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        用TUNEL流式细胞定量凋亡细胞

        相关实验:细胞凋亡:流式细胞仪检测实验

        最新修订时间:

        原理



        材料与仪器

        步骤

        1a)多色分析:进行免疫荧光染色。重悬染色细胞于PBS,转移含5×105个细胞的细胞液至一 12 mm×75 mm圆底离心管。必须确保用于多色染色的荧光团没有被TUNEL步骤的固定剂破坏。FITC、PE和Texas红不受影响。


        Duochromes (PE和Texas红的结合物,如Red 613)也不受影响,但是别藻蓝素(APC)会被固定剂破坏。


        1b) TUNEL检测:转移含5 ×105的细胞液至一 12 mm×75 mm圆底离心管。


        2)加入1〜2 ml PBS,然后 4℃,300 g (IEC 269转子则为1200 r/min)离心5 min 沉淀细胞,弃上清。重悬沉淀于250μL PBS,然后边轻柔涡旋振荡边5〜10 s—滴一滴地加入750μL冰冷的95%乙醇。4℃孵育20 min。


        3)加入2 ml PBS洗涤细胞,4℃,400 g离心5 min。弃上清。


        4)倾斜试管用余下的缓冲液重悬细胞,边轻柔涡旋振荡,边间隔5〜10 s滴加入1 ml多聚甲醛固定液。室温孵育30 min。


        5)按步骤3同样用PBS洗涤细胞,如果需要可于4℃暗室储存几天。


        6)按步骤3同样洗涤细胞,用0.5 ml TdT反应液替代PBS。弃上清后立刻反转试管口于吸水纸上,以此尽可能多地弃除上清。


        7)加入50μL TdT/生物素-dUTP混合液到细胞沉淀里,于37℃孵育45 min。


        8)按步骤3同样用PBS洗涤细胞,然后加入10μL FITC-链霉亲和素结合物(以制造商推荐的稀释液)。室温孵育30min,然后按步骤3用PBS洗涤细胞。


        9)进行流式细胞仪分析

        来源:丁香实验

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