干细胞与肝组织工程
最新修订时间:
材料与仪器
步骤
骨 髓 造 血 干 细 胞

骨 髓 间 充 质 干 细 胞

人 胎 肝 干 细 胞
1 ) 人胎肝干细胞的分离、培养和鉴定 (图 9.4)(Tatenoc et al. 2002)
⑴ 水 囊 引 产 中 期 (6 月龄) 妊娠胎儿 (孕妇身体健康,肝功能正常,胎儿处置获得其父母的知情同意)


诱 导 分 化 的 肝 脏 细 胞 的 鉴 定
1 ) 免疫荧光法染色检测
取不同代数 M S C 诱 导 后 2 0 天的细胞爬片,进 行 C K 18、 A F P 、白蛋白等肝脏细胞标志物/特异蛋白的免疫组化鉴定,第 二 抗 为 F I T C 或 T R I C E 标 记 的 IgG, 阴性对照用O. OlmmolTL 的 P B S 代替一抗,实验对照用未诱导的 M S C 细胞爬片直接进行免疫组织化
学染色。参照中山生物技术公司提供的免疫组化染色方法,操作步骤如下。
⑴ 细 胞 爬 片 用 P B S 洗 涤 3 次 ,每 次 5 min。
⑵ 4 % 的多聚甲醛室温固定 I5 min, P B S 洗 涤 3 次 ,每 次 5 min。
(3) 用 0.1% Triton 似增加细胞膜的通透性) 和 3 % 过氧化氢 (以消除内源性过氧化物酶的活性) 孵育 lOmin。
⑷ 蒸 馏 水 冲 洗 , P B S 浸 泡 5 min。
(5) 加 2 〇% 马血清 (1 :20) 以封闭非特异性结合位点, 37T 孵 育 15 min。
(6) 巧去血清 (不洗涤),分另 Ij 加 TnI 和 desmin 抗体工作液 5 〇叱置于湿盒中于 37 ℃孵 育 30ml放 代 过 夜 ;阴性对照用〇.01m m o y L 的 P B S 代替一抗,实验对照用未诱导的 M S C 细胞爬片直接进行免疫组织化学染色。
(7) PBS 冲洗, 5 minx3 次
。
(8) 滴加荧光标记的二抗 (兔抗山羊 IgG-F I T C 和抗小鼠 IgG-TRITC) 工作 液 37℃孵育30 min
(9) P B S 冲 洗 3 次 ,直接在荧光显微镜下观察实验结果并拍照。
2 ) 电镜观察
⑴ 细 胞 用 培 养 基 洗 涤 3 次后,用细胞刮刮去细胞,抽吸细胞悬液,置入玻璃离心管 , 800r/min 离心 8 min。
⑵ 前 固 定 : 3 % 戊二醛 (l/15mol/L P B S p H 7.4),代 下 固 定 2 h 。
⑶ 漂 洗 :代 条 件 下 , l/15mol/L P B S +0.19mol/L 蔗糖缓冲液反复漂洗。


![⑶ PCR扩增(20|i l 体系): IOxPCR buffer(含 MgCl2) 2.0fil dNTP(2.5mmol/L) 2.0jj,l 引物 l (l 〇Hmol/L) I.Ofal 引物 2(10|imol/L) 1鄭1 TaqD N A 聚合物 0.5(il cDNA(模板) 1.0(^1 灭菌水 12.50 总体积 20.0^1 PCR反应条件为: 94T :变 性 5min后开始扩增循环,循环参数为9 4 1 、 30s , 5 5 1 、 35s , 35 个循环, 7 2 1 、 7min 后 4T :保存。 用 G A P D H 作标准对照。 G A P D H 引物如下: 上游引物: 5,-ACC A C A G T C C A T G C C A T C A C -3,; 下游引物: 3' T C C A C C A C C C T G T T G C T G T A -5、 (6)琼脂糖凝胶电泳:分 别 取 P C R 扩增产物印1在 1 % 的琼脂糖凝胶上进行电泳,电 泳 缓 冲 液 为 l x T A E 。 4 ) 分化细胞的功能检测 (I)P A S 染色检测糖原。细 胞 以 9 5 % 乙醇固定IOmin, 蒸馏水冲洗干净, 1 % 过碘酸 水 溶 液 反 应 IOmin, 蒸馏水冲洗,晾干,加 Schiff试 剂 30min, 亚硫酸水洗3 遍 ,自来 水冲洗,晾干,加 2 % 甲 基 绿 复 染 15min,自来水充分冲洗、常规脱水、透明、中性树 胶封片。糖原在胞质内为红色阳性物,呈弥散状、颗粒状或块状。 ⑵ 尿 素 检 测 。在培养液中加入 1 0 m m o l / L 的 N H 4C l 培 养 24h ,用尿素试剂盒测定产 生的尿素的浓度。 (3)利 用 E C O D 活性检测细胞色素P-450酶的活性(Pohlet al. 1980)。反应体系中含 100m m 〇]7L 6-磷酸葡萄糖 lOOjil, 6-磷酸葡萄糖脱氢酶 2U , 100mmol/L M g S 0 4 100(11, 4〇 mg/ml 牛血清清蛋白 100叫,〇.〇4mmol/L E R F lOOjil,SlO 0.5m L ,O.lmol/L p H 7 . 8 H e p e s 液0.251111,0.4111111〇 1/1^入〇 1^10(^1。反应体系总体积为1.251111。反应物于37^孵育30111111 后 ,加 2.5m l 甲醇终止反应。经 3000r/m i n 离 心 IOmin去除沉淀蛋白质,上清液用突光](http://img.dxycdn.com/trademd/upload/userfiles/image/2016/07/A146917188911398bqirdseypng_small.jpg)
![分光光度计于发射波长585n m 、激 发 波 长 550n m 测 定 EROD反应终产物乙氧基-9-羟基 异吩噃唑酮的荧光强度。 (4) 蛋白质合成功能检测(1'〇叩技&1.1992)。将1^11/1111[3印-亮氨酸加入培养基中,置 于 37T 、 5 % C O 2培 养 24h 。肝脏细胞用H a n k 缓冲液离心洗涤2 次 ,然后在细胞滤纸上 用 体 积 分 数 为 1 0 % 的三氯醋酸裂解和无水乙醇固定,用液体闪烁仪计数[3H ]-亮氨酸的 旦 里 。 (5) 葡萄糖合成功能。将培养基换成含160g/L (m/V)果 糖 的 Hank-HEPES液 ,分别于 lh 、 4h、 8h 取上清在全自动生化仪(MEGA Toshiba)上测定葡萄糖的浓度。 (6) 安定转化功能(Baccarani et al.2000)。 在培养基中加入20mg/L (m/V)安定标准品 培 养 24h(Burchell et al.1988), 用荧光偏振免疫分析仪(Abbott TDX)测定上清中安定的浓 度 。 (7) 葡萄糖_6_磷酸酶(G -6-Pase)活性。收集肝脏细胞、粉 碎 ,以葡萄糖-6-磷酸为底物, 反应的终产物磷酸的量表示该酶的活性。 (8)靛青绿(ICG)摄取实验(Yamada et al. 2〇〇2)。向培养体系中加入ICG 37T 孵育 15m i n 后 ,只有肝脏细胞能被染成深绿色;换回完全培养基常规培养4h 之内,着色细胞 的颜色完全褪去。](http://img.dxycdn.com/trademd/upload/userfiles/image/2016/07/A1469171914613xuyijbufpvpng_small.jpg)
来源:丁香实验









