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        基本方案

        相关实验:免疫筛选实验

        最新修订时间:

        材料与仪器

        步骤

        1.  往微量滴定板的每孔中加入250 μl 含适当抗生素的选择性BHI培养液,并分别接种独立的cDNA克隆,37℃温育过夜。

        2.  在250 ml 烧瓶中加入50 ml BHI/抗生素培养液,以10个克隆过夜培养液为一组, 从每个微孔中取100 μl 培养液,混合后接种到烧瓶中。

        3.  37℃培养至A590=0.7,然后加入氯霉素继续于37℃温育过夜;对每组10个过夜的克隆重复培养。

        4.  2 000 g  4℃离心10 min,制备质粒DNA。
         
        5.  将制得的约50 μg 质粒DNA溶于1.5 ml TE缓冲液中,移入15 ml无菌、带盖的玻璃培养管中。

        6.  沸水浴10 min立即加入1.5 ml 1 mol/l NaOH,室温放置10 min。

        7.  加 9 ml 中和液,混匀后置于冰浴,检测pH只值应在6.5~7.5之间。
         
        8.  将0.45 μm 孔径的硝酸纤维素滤膜放在一个连于真空泵的多孔滤器上。

        9.  以1 ml/min 的速率加入第4步得到的变性DNA液,待所有液体被吸干后继续抽吸3 min。

        10.  取出滤膜用50 ml 6×SSC洗涤,然后于80℃真空烤箱中烤膜2 h。

        11.  用无菌的单孔打孔器在滤膜上打出直径为5 mm 的圆形小块滤膜,分别用圆珠笔作好标记。
         
        12.  将盛于无菌带盖的塑料管的含10~50 μg poly(A)+ RNA的0.3 ml 杂交液在70℃预热10 min。

        13.  然后将10片小滤膜放入杂交液中,在50℃温育2 h。

        14.  将小滤膜转移到50 ml 的试管(每管最多可装20片膜)中,每次用225 ml TES/0.5%SDS冼液于65℃旋转振荡洗涤30 s,共10次,吸去上请。

        15.  然后每次用25 ml TES液干65℃洗膜,共2次。

        16.  将每片小滤膜分别转移到无菌、硅化的1.5 ml 微量离心管中,每管加入0.3 ml 水、2 μl 10 mg/ml 的酵母tRNA。

        17.  置沸水浴中变性60 s,立即置干冰或冷乙醇中速冻。 接着在室温下解冻。
         
        18.  用无菌针挑去滤膜,往每个微量离心管中加入150 μl 饱和酚和150 氯仿/异戊醇,混匀,离心后将水相转移至无菌的微量离心管中。

        19.  加入30 μl 3 mol/l 乙酸钠和2 倍体积的无水乙醇,离心沉淀核酸15 min,用0.5 ml 乙醇洗涤一次后冻干。

        20.  将此杂交选择的RNA重悬于10 μl 水中。

        21.  取5 μl 杂交选择的RNA,加入10 μl 翻译反应混合物,其中含标记的甲硫氨酸, 30℃温育60 min。
         
        22.  加入15 μl 免疫沉淀缓冲液和1 μl 未经免疫的血清,室温下温育10 min。

        23.  加入40 μl 蛋白质A-Sepharose悬液,在室温静置30 min、离心2 min 后将上清移至另一个新的微量离心管中。

        24.  加入1 μl 针对相关基因产物的多克隆抗体或单克隆抗体,于室温下温育10 min。
         
        25.  加入40 μl 蛋白质悬液,于室温反应30 min,离心弃上滑。
         
        26.  依次用1 ml 免疫沉淀缓冲液、1 ml 高盐免疫沉淀缓冲液和1 ml 水冼涤蛋白A-Sepharose微珠。
         
        27.  用20 μl 2×SDS样品缓冲液重悬沉淀,沸水浴10  min。

        28.  将吸附在蛋白A-Sepharose微珠上的翻译产物洗下来,离心后等分成15~20 ml 的小份进行变性SDS-PAGE电泳。
         
        29.  干胶并进行放射自显影曝光。

        来源:丁香实验

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