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20
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上海博尔森生物
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500 ml
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文献和实验,在其中解剖。根据我的经验,即使是0度,神经元还是在进行着很大程度代谢。所以,hanks的无糖环境很不利。我个人建议,用DMEM-高糖或DMEM-F12+马血清来浸泡解剖过程中的大脑,来供给大脑的代谢,血清可以抑制神经凋亡。这其中还有一个问题,就是DMEM培养液会在空气中变碱性。国外有的实验室用L-15培养液来浸泡解剖过程中的脑,因为L-15不会再空气中变碱性。没有L-15的(国内几乎没有),可以全程用DMEM-HG或者DMEM-F12+血清浸泡解剖过程中的脑。注意注意:一切操作都在冰浴的液体中
丁香园网友hyong915的观点为:成纤维细胞培养(一) 原代培养1、在手术室无菌条件下,切取新鲜的皮肤,增殖性瘢痕和瘢痕疙瘩组织,修除表皮和皮下组织,盐水反复冲洗后放入含PS的DMEM培养液内带回无菌工作间。2、把组织块置于培养皿内,Hank,s液漂洗三遍后吸净Hank,s液,眼科剪反复剪切组织块成0.5-1mm3大小。用弯头吸管吸取组织块接种于40ml培养方瓶瓶壁上,组织块间留约0.3-0.5cm的间距。3、 塞好瓶塞,放入37℃电热恒温培养箱内3.5小时使培养的组织小块微干涸
没长出来,DMEM/F12时,24小时候,培养瓶中会出现一种很细小的像细菌一样的小东西,但是培养液一直是清亮的,这些小东西经过染色不着色,而且随着时间延长而大量增多,有的一直漂在液中,有的会贴服培养瓶底部,冲洗不掉,不知道是什么东西? 2:关于组织剪碎: 由于我取的是阴道残端的一小块组织,但是肉眼没法仅将上皮层取下,故直接完全剪碎,直接铺板。 可有人说应该剪得块大些,用镊子夹着组织块,让上皮层的面朝向培养瓶的底部,这个确实很难做到,因为组织本来就很小,稍做剪碎
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