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- 库存:
50
- 细胞类型:
见详情说明
- 品系:
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- 组织来源:
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- 相关疾病:
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- 物种来源:
人
- 免疫类型:
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- 细胞形态:
贴壁
- 器官来源:
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- 运输方式:
常温/干冰运输
- 年限:
见详情说明
- 生长状态:
优良
- 规格:
1×106cells/T25培养瓶
1.1离心法
1.1.1准备一个T25的细胞培养瓶并做好标记,预热好的细胞完全培养基,一支15ml离心管,离心管中加入4-5ml细胞完全培养基。
1.1.2取出细胞冻存管,在37度水浴中快速解冻,将管子擦干并消毒后迅速拿回生物安全柜。
1.1.3将细胞悬液转移到加有培养基的离心管中,1000转离心5分钟。
1.1.4倒掉上清,加入培养基轻轻重悬细胞亦可先将细胞团弹散后加入培养基混匀。
1.1.5将重悬好的细胞转移到T25细胞培养瓶,补充培养基到8ml左右,十字摇晃,将细胞铺匀后放入培养箱培养。
1.2不离心法
1.2.1准备一个T25的细胞培养瓶并做好标记,预热好的细胞完全培养基,培养瓶中加入8ml左右培养基。
1.2.2取出细胞冻存管,在37度水浴中快速解冻,将管子擦干并消毒后迅速拿回生物安全柜。
1.2.3将细胞悬液转移到加有培养基的培养瓶中,十字摇晃,将细胞铺匀后放入培养箱培养,接种16小时后更换培养基。
2.细胞传代
2.1准备细胞完全培养基,细胞培养瓶,胰酶(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA),DPBS。
2.2弃上清,并加2-3mlDPBS轻柔冲洗培养瓶内细胞1-2次。
2.3加入1ml胰酶,室温或者37度消化,直到细胞成片脱落,加入3-4ml完全培养基终止消化,如果有成团块脱落的细胞可轻轻吹打分散细胞后再终止消化。
2.4收集细胞悬液,1000转离心5分钟,弃上清,加入培养基轻轻重悬细胞亦可先将细胞团弹散后加入培养基混匀。
2.5将重悬好的细胞按比例分装至T25细胞培养瓶,补充培养基到8ml左右,十字摇晃,将细胞铺匀后放入培养箱培养。
3.细胞冻存
3.1准备细胞冻存液,细胞冻存管,胰酶(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA),DPBS。
3.2弃上清,并加2-3mlDPBS轻柔冲洗培养瓶内细胞1-2次。
3.3加入1ml胰酶,室温或者37度消化,直到细胞成片脱落,加入完全培养基终止消化,如果有成团块脱落的细胞可轻轻吹打分散细胞后再终止消化。
3.4收集细胞悬液,1000转离心5分钟,弃上清。
3.5加入冻存液,重悬细胞,并分装到冻存管,冻存密度0.8-1.5×106细胞/ml。
3.6将冻存管放入程序降温盒,并放到-80℃冰箱,过夜后将冻存管转移到液氮保存。
4.注意事项
4.1建议收到细胞后先用我们配套的培养基和血清。收到活细胞的客户培养瓶中的培养基可回收使用,保存在4度可使用一周。
4.2不同实验室操作上会有些许差异,为了避免细胞不适应,请先按照说明书推荐的方法和操作步骤培养,待细胞冻存后可根据自己的习惯操作看细胞是否能够适应。
4.3建议收到细胞后,前几代及时冻存一些细胞,并最好是可以多冻存几个批次。
细胞系收货须知:
收到的货物会包含以下几种类型,您的货物属于:
□细胞冻存管:收到货物后,请检查箱子里面是否还有干冰。
● 若干冰已剩余不多,不能掩埋冻存管,请及时拍照,并第一时间联系销售。
● 若干冰充裕,可以安排复苏细胞;不安排复苏,请将细胞冻存管转移到液氮进行保存。短期(一周内)的存放可以放在-80冰箱,建议最好保存在液氮中。
□培养瓶的活细胞:收到请检查培养瓶是否完好,是否有漏液,培养基是否浑浊
●若出现以上问题请于当天和我们销售取得联系,我们会第一时间为您处理。
● 若以上问题都没有出现:拆掉培养瓶的外包装,在显微镜下对细胞进行多个视野,不同倍镜拍照。然后用酒精对瓶身进行彻底消毒,放在37度二氧化碳培养箱中进行复温。1-2小时后,拿出在显微镜下观察,并进行多个视野不同倍镜拍照。若细胞达到了可以传代的密度,请及时进行传代。若细胞密度不能进行传代,请回收培养瓶中的培养基,留适量培养基在瓶中,并将培养瓶放在培养箱继续培养即可。
□消化后的细胞悬液:收到请检查管子是否有漏液
●若漏液,请当天和我们销售取得联系,我们会第一时间为您处理。
●若完好,将管子用酒精彻底消毒,收集细胞悬液到离心管,1000转,离心5分钟,弃上清,加入培养基重悬,按照 比例分装到 个T25培养瓶,并补充培养基到 ml即可。
本产品仅用于科学研究使用等非医疗目的,不可用于人类或动物的临床诊断或治疗,非药用,非食用
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文献和实验光素酶活力。在完成萤火虫荧光素酶活力(“实验”报告基因)的测定后,萤火虫发光被快速湮灭,并同时激活海洋腔肠荧光素酶的发光反应(“对照” 报告基因)。因此,DLR测试系统整合了两个测试化学,对共表达的两个报告基因作快速地定量,酶来自转染细胞裂解液,或无细胞转录翻译反应。萤火虫荧光素酶测试的线性范围延伸达酶浓度的8个数量级,可测定≤1fg (大约10 -20 摩尔)的实验报告基因酶(图3A)。用双荧光素酶报告基因测试系统,海洋腔肠荧光素酶的线性范围达酶浓度的7个数量级,较低的底限是≤10fg (大约3×10 -19
选择是RNAi实验成败的关键。哺乳动物细胞RNAi实验中,使用最广泛且最有效的是21bp siRNA。siRNA由正义链和反义链组成,两条链3’端均有2个碱基突出,一般为UU或dTdT,其中正义链的前19nt与靶基因序列相同。1. siRNA设计的原则SiRNA双链设计时,一般在靶mRNA起始密码下游100—200bp至翻译终止密码上游d0—100bp的范围内搜寻AA序列,并记录每个AA3’端相邻19个核苷酸作为候选si.RNA靶位点。其中AA(N19)TT是最理想的序列,若靶mRNA中无此序列,亦可
/ml,确保转染时细胞没有长满或处于静止期。因为转染效率对细胞密度很敏感,所以在不同实验间保持一个基本的传代步骤很重要。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。细胞的融合度必须要达到90%才能做。 05启动子的选择 获得高转染活性所需选择的启动子依赖于选用的细胞系和要表达的蛋白。CMV启动子在大多数细胞类型中可以获得高表达活性。同其他启动子,如SV40和RSV(劳斯肉瘤病毒)相比,在BHK-21中其活性最高。这三种病毒启动子在T细胞来源的细胞系,如Jurkat中组成表达水平较低。转染
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