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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
4℃,6个月
- 保质期:
6个月
- 库存:
100
- 供应商:
上海研生
- 规格:
100ml
特点:
1、采用全进口原料:高效、灵敏、特异,严格引进国际技术标准进行批量。
2、先进的优化方案:重复性高,可靠性强,效果稳定。
3、购买本公司的溶液,提供免费代测技术服务的,有技术疑问可以提供一对一的解答,存在质量问题可申请退换。
4、技术服务:专业,及时,耐心。
标准溶液配制:
1。先將PH7.00同PH4.00藥粉分別倒入250毫升蒸餾水中,充分溶解,用兩支玻璃瓶密封保存,做 好標簽。
2 。在校正前,準備ORP標準溶液。
3 。86毫伏:取50至100毫升PH7.00標準溶液置入一玻璃杯中,再加入稍許醌氫醌,充分攪拌。
4 。256毫伏:取50至100毫升PH4.00標準溶液置入一玻璃杯中,再加入稍許醌氫醌,充分攪拌。 5。 ORP標準液保存期為72hour。
注意事项:
1.根据实验具体要求操作,以说明书为准。
2.一般植物细胞筛选浓度在20~200μg/ml,动物细胞筛选浓度50~1000μg/ml,应根据具体实验选择最佳筛选浓度。
3.做好预防颠倒,摔坏的措施和管理体制。
4.必须戴好防护用具,小心翼翼进行操作。
5.购买试剂时要想到一次性用完。若估算不足有剩余的话,要更加注意其保管和管理。
6.对于使用后的废弃物,不要或旧的试剂,应按照相关法律法规正当处理。
使用方法:
1. 常用筛选浓度
注意:用来筛选稳转株的工作浓度需要根据细胞类型,培养基,生长条件和细胞代谢率而变化,推荐使用浓度为50-1000μg/mL。对于第一次使用的实验体系建议通过建立杀灭曲线(kill curve),即剂量反应性曲线,来确定最佳筛选浓度。
一般而言,哺乳动物细胞50-500μg/mL;细菌/植物细胞20-200μg/mL;真菌300-1000μg/mL。
2. 杀灭曲线的建立
注意:为了筛选得到稳定表达目的蛋白的细胞株,需要确定能够杀死未转染宿主细胞的抗生素最低浓度,可通过建立杀灭曲线(剂量反应曲线)来实现,至少选择5个浓度。
1) 第一天:未转化的细胞按照20-25%的细胞密度铺在合适的培养板上,37℃,CO2培养过夜;注:对于需要更高密度来检测活力的细胞,可增加接种量。
2) 根据细胞类型,设定合适范围内的浓度梯度。以哺乳动物细胞为例,可设定50,100,250,500,750,1000μg/mL。先用去离子水或者PBS buffer按照1:10的比例将母液稀释到5 mg/ml,然后按照下表稀释到相应浓度的工作液。
3) 第二天:替换旧的培养基,换用新鲜配制的含有相应浓度药物的培养基。每个浓度做三个平行孔。
4) 接下来每3-4天更换新的含药物培养基。
5) 按照固定的周期(如每2天)进行活细胞计数来确定阻止未转染细胞生长的恰当浓度。选择在理想的天数(通常是7-10天)内能够杀死绝大多数细胞的最低浓度为稳定转染细胞筛选用的工作浓度。
3. 稳定转染细胞的筛选
1) 转染48h后,用含有适当浓度的潮霉素B筛选培养基来传代细胞(直接传代或者稀释后传代)。
注意:细胞处于活跃分裂状态时抗生素的杀伤效果最好。则当细胞过于稠密,其效率会降低。为了得到较好的筛选效果,最好将细胞稀释至丰度不超过25% 2) 每隔3-4天更换含有药物的筛选培养液。
3) 筛选7天后观察并评估细胞克隆(集落)的形成情况。集落的形成可能还需要一周或者更多的时间,这取决于宿主细胞类型,转染,以及筛选效果。 4) 挑取并转移5-10个抗性克隆于35mm细胞培养板,继续用含药物的筛选培养液维持培养7天。
5) 之后更换正常培养基培养即可。
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文献和实验1. 前言 在蛋白质组研究中,双向电泳图谱的比较占有重要地位。双向电泳必须能很好地分离各个蛋白质,应尽量避免拖尾、横纹或因蛋白质降解而产生的假相。蛋白质在图谱上的分布模式必须是可重复的。蛋白质样品的制备是这些条件得以保持的重要前提。植物蛋白提取的难点在于植物细胞中蛋白质的含量低,同时还含有很多干扰蛋白提取的有机物 ,如酚类、色素、脂类及核酸等 [1] 。提取出的蛋白必须溶解在与等电聚焦 (IEF ) 电泳缓冲系统兼容的样品溶液中。 经过在各种植物组织中的试验,我们建立了一种以三氯乙酸
(1)还原SDS处理:在上样buffer中加入SDS和DTT(或Beta巯基乙醇)后,蛋白质构象被解离,电荷被中和,形成SDS与蛋白相结合的分子,在电泳中,只根据分子量来分离。一般电泳均按这种方式处理,样品稀释适当浓度,加入上样Buffer,离心,沸水煮5min,再离心加样。 (2)带有烷基化作用的还原SDS处理:碘乙酸胺的烷基化作用可以很好的并经久牢固的保护SH基团,得到较窄的谱带;另碘乙酸胺可捕集过量的DTT,而防止银染时的纹理现象。100μl样品缓冲液中10μl 20%的碘乙酸
灯进行整体消毒。长期未使用的细胞房在实验前需要用 20% 乙酸蒸 24 h。2. 二氧化碳培养箱消毒二氧化碳培养箱定期需要用 70% 乙醇擦拭托盘和内壁,同时使用手提紫外灯进行消毒。培养箱低端托盘的水也要为无菌水,并两周更换一次。3. 器皿灭菌、消毒玻璃器皿和螺口盖采用高压灭菌(121 ℃,100 kPa,20 min),玻璃器皿包括移液管、冻存瓶、盖玻片、载玻片、玻璃注射器、玻璃试管、吸管等。 螺口盖的盖子分为有內垫的金属或酚醛树脂盖、聚丙烯盖子、硅树脂盖子、白橡胶盖子。塑料器皿的消毒通常采用紫外
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