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- 2026年01月02日
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上海达为科生物科技有限公司
- 服务名称：
大小鼠尾静脉给药动物实验
| 品牌 | 其他品牌 | 产地类别 | 国产 |
|---|---|---|---|
| 应用领域 | 医疗卫生,生物产业 |
大小鼠尾静脉给药动物实验是达为科生物的基础服务项目之一，由专业的动物实验人员操作完成。
大小鼠尾静脉给药动物实验操作流程：
1、将实验大、小鼠固定在固定器内，暴露尾部。
2、用左手抓住实验鼠的尾巴中部，选择尾部左右两侧静脉中的一条(两侧为静脉，背腹侧为动脉)。
3、用75%酒精棉球反复擦拭尾部，以达到消毒和使尾部血管扩张及软化表皮角质的目的。若血管扩张
不明显，推荐采用温水浸泡的方法，水温以不烫手为宜。温水浸泡2-3分钟后，取出大、小鼠尾巴，用干棉球擦拭。待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以进针了。若血管还不充盈，可以反复用温水浸泡。
4、以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，并使静脉朝上。
5、用中指从下面托起尾巴，以无名指及小指挟住尾巴的末梢。
6、右手持针头注射器(带4或4. 5号针头)，使针头与静脉平行(小于30° )，从尾巴的下1/4处进针。针尖斜面朝上，轻轻挑刺入皮肤后针头立即和血管平行。
7、开始注射时宜少量缓注，动作宜轻柔，如无阻力，无白色皮丘出现，固定针头和尾巴，解除对尾根部的压迫后，便可继续注射。
8、如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾根部方向移动针头再次穿刺。
9、一般推进速度为0.05-0. 10mL/s，-次注射量:大鼠0.5-1. 0mL/100g，小鼠0.05-0. 25mL/10g.
10、注射完毕后把尾部向注射侧弯曲或用左手拇指按压注射部位1-2分钟以止血。
11、如需反复注射，尽量从尾的末端开始，按次序向尾根部移动，更换血管注射部位。
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文献和实验实验动物基础知识之实验常用大小鼠 实验动物小课堂开课啦~~ 实验用小鼠 01、C57BL/6小鼠 来源： 1921年立特(Little)用艾比·拉特洛坡(Abby Lathrop)的小鼠株，雌鼠57号与雄鼠52号交配而得C57BL，将毛色呈黑色的进行固定，培育成的产物。1937年Little将维持的C57BL第六组亚系定名为C57BL/6，将第十组亚系定名为C57BL/10，继而分别维持至今。1985年从日本
血压测量方法分为直接测量法和间接测量法一、间接测量法也就是常说的尾压法（Tail-cuff法）。将传感器套在老鼠尾部，通过充气、放气对尾动脉加压和释压的同时监测血流信号，得出血压值。优点：无创，不需手术。把老鼠固定在特定的保温装置内，尾巴上套上传感器，从固定到得出结果只需3-10分钟。尤其适用于每隔数天就需要重复测量的实验。不足：①测量的是某个时间点的血压，不能得到连续的血压曲线，无法监测血压微小的变化②舒张压的准确度有待商榷。有文献报道，将间接法和直接法比较，74%的舒张压误差大于
，将注射器固定至脑立体定位仪上。 b．将注射器对准小鼠头骨上的小孔。将针管插入小鼠颅腔内，插入深度大约为3mm。 c．注射泵，将小鼠血液缓慢注射进颅腔内，推进大约30ul。 d .注射完成后，等待大约5分钟后，将针管缓缓退出。 4．缝合 a．用缝合针将小鼠的头部皮肤重新缝好，滴2滴抗生素。 b．缝合完成后将小鼠从鼠板上取下，放回笼休息。 所有动物实验均由多年经验的老师们亲自指导操作、每个实验项目均有专人负责。保证高成模率、保证实验结果客观真实，节省您的宝贵时间。 疾病名称
