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上海玉博生物科技有限公司
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文献和实验Cas9蛋白质的结构信息可能无法获得(事实上,目前只有少数的Cas9蛋白质的结构已经晶体化)。10月份《自然方法》上的一篇文章提出了一种稍微不同的生物工程方法:Scot Wolfe和他的同事描述了Cas9与可编程dna结合域的融合。该结构域可与sgRNAs协同设计,从而显著提高识别特异性。更重要的是,SpCas9融合蛋白对一系列PAMs (NAG、NGA、NGC和(SpCas的canonical) NGG)同样有效。可以想象,在未来,如果可以设计出一种核酸酶,其中的DNA亲和力由其识别序列定义,融合
【转帖】教你一种简单、高效的提高重组蛋白质的诱导表达量的方法
。 实验步骤: 1.设计目的重组蛋白质的N端10-15个氨基酸的简并序列。 2.引物合成上述简并序列,同时设计合成目的基因反向引物。 3.PCR扩展目的基因,这样在目的基因的5‘端就引入了兼并序列,同时不改变氨基酸序列。 4.双酶切,插入到目标载体。 5.转化。 6.挑选多个克隆(比如100-200个)到1.5ml EP管,直接诱导表达(记得带上为改造克隆菌株的对照)。 7.SDS-PAGE检测。 8.挑选高表达的多个克隆,测序。 怎么样?是不是很简单,不需要做太多的摸索
重组蛋白质的表达、纯化、复性和定量 按Qiagen公司的操作手册进行,具体步骤如下。 一、重组蛋白质的诱导表达 1.挑取转化有质粒的单菌落,接种于3ml 选择性LB液体培养基中,37 o C,250 rpm/min振摇培养过夜。 2.次日将培养过夜的菌液500 μl再接种于10 ml(1: 20)选择性LB液体培养基中,37 o C,250 rpm/min振摇培养至光密度(OD600 =0.6)时,取1 ml样本作为诱导前标本
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