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文献和实验听到很多人抱怨,在免疫组化实际操作中遭遇过组织易脱片的问题,今天我将结合一些个人经验,与大家分享简单易操作的解决方法。方法一:使用防脱玻片,组织当然是越新越好。方法二:某些免疫组化染色时候,需要涉及多种抗原修复方法,如某实验需要双修复(热修复和酶修复),热修复相对来说是比较剧烈的(如放在 EDTA 中煮 1 min),沸腾的液体对组织还是有很大的冲击力的,此时组织容易脱,如果热修复放在酶修复后,则组织更容易脱,相反如果将不剧烈的酶修复放在热修复后,可以减少脱片的发生。但很多时候知道这些似乎解决
开竖放在架子上,于空气中自然干燥,4℃备用。注意:①浸蘸时,务必使整个玻片完全浸于液体中,否则,包被不完全会产生标本脱落现象;②干燥过程中注意避免尘埃污染;③按上法处理的玻片通常可存放在一定时间(室温1月以上,4℃更长),但仍建议尽早使用。 (2)多聚赖氨酸1mg溶于10ml灭菌的去离子水或1mmol/L的Tris-HCl缓冲液中(pH7.0),将其涂布于玻片上,待干燥后即可使用。该法包被的玻片可用于细胞涂片和切片。 (3)将PLL工作液滴至盖玻片上5μl/片,用另一盖玻片以推血
,说是马血清可封闭牛血清刺激PC12分化的位点,究竟位点在哪?是否和NGF刺激位点一致,尚不清楚。不过按5%HS,10%FBS培养应该没错。 丁香园monde的观点: 我养这个细胞一年多了,有点经验和大家交流一下。 1.我用的是15%的马血清和2.5%的胎牛,胎牛要用进口的,国产的容易分化。 2.关于表面处理的问题,值得注意的是胶原和多聚赖氨酸使细胞贴壁的原理不太一样。多聚就是纯粹的物理黏附作用,而胶原则是刺激的细胞,使细胞的表达一些能有助于贴壁的蛋白,这种刺激作用还涉及到MAPK途径
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