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北京永欣康泰科技发展有限公司
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大小鼠心肌缺血再灌注模型(I/R)
一、大小鼠心肌缺血再灌注模型制备方法
1、实验动物:
(1)SD大鼠 雄性 体重:180-200g 周龄:6-7周 动物等级:SPF级
(2)C57BL/6J小鼠 雄性 体重:22g±2g 周龄:8周 动物等级:SPF级
2、手术方法:
动物深度麻醉,确认麻醉状态后,备皮,安装好心电监护仪,消毒局部皮肤,铺洞巾后剪开肋间皮肤,钝性分离肌肉、打开心包膜,将心脏推出体外,暴露左冠状动脉前降支,用6-0无菌丝线快速结扎,打活结,看到心脏底部变白,用荷包缝法迅速关闭胸腔,挤压防止气胸,造成左室前壁心肌缺血。分别记录术前、缺血时心电图变化。
到达缺血时间以后,打开胸腔,解开活结,再次关闭胸腔,缝合肌肉皮肤,进行心肺复苏。分别记录术前、缺血时和再灌注后的心电图变化。造模成功后进行药物治疗,术后观察动物活动、采食情况。处死前对实验动物采血。术后进行心肌组织取样、TTC-Evans blue染色,进行心梗面积计算。
3、手术后护理及观察:
a.术后护理:术后单笼饲养,常规饲料及饮水。
b.观察:每天观察动物死亡或濒死情况、精神状态、行为活动、进食等。
c.伤口局部观察:术后每天1次,观察伤口有无红肿发炎等。
d.体重称量记录:术后2次/周,称重并记录体重变化情况。

二、实验操作及检测平台:
1、心肌内多点注射
2、灌胃、腹腔、尾静脉等多途径给药、大小鼠眼底静脉丛、大动物静脉采血
3、实时心电监护,输出心电图
4、动物心脏超声及数据分析
5、Micro-CT、小动物核磁成像
6、心脏TTC染色(双染)
7、心脏病理切片,HE、masson,天狼猩红染色
8、病理读片,分析梗死面积、胶原百分比
9、免疫组化、免疫荧光、凋亡(Tunel)
10、透射电镜、扫描电镜分析
11、WB、QPCR 心梗相关血清指标检测(CK-MB等)
特点:
1、制备过程技术娴熟,最大限度的保证入组动物梗死程度均一
2、不存在因气管切开而引起的窒息死亡
3、创伤小,恢复快,最大限度减少人为因素对实验结果的干扰
检测平台
| 服务项目 | 服务承诺 | 服务周期 | 样本种类 |
| 病理切片、免疫组化 | 染色结果照片 | 2-3周 | 组织 |
| Western blotting | 胶片 | 1-2周 | 蛋白样本或组织 |
| 流式细胞服务 | 散点图、分析数据、设备信息等 | 1-2周 | 血样、骨髓等 |
| 细胞凋亡检测 | 凋亡图、数据分析 | 细胞 | |
| RT-PCR | 扩增图 | 1-2周 | RNA或组织 |
| 血压监测(无创式) | 实时血压数据 | 大、小鼠 |
备注:以上只是常规制备的动物模型种类,如果有其他动物模型制备的需求,也可以按照方案进行定制

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文献和实验王平安,杨珂伟,王静,焦成.大鼠心肌缺血再灌注损伤模型建立的改良方法[J].中国比较医学杂志,2020,30(1):104~108.
心肌缺血再灌注模型: 心肌缺血是指心脏血液灌注减少,导致心脏供氧减少,心肌能量代谢不正常,不能支持心脏正常工作的一种病理状态。冠心病是临床常见的缺血性心脏病,是指冠状动脉发生粥样硬化引起管腔狭窄或闭塞,导致心肌缺血缺氧或坏死而引起的心脏病,临床以血运重建治疗为主。然而,目前大量研究结果显示,缺血心肌组织恢复血流供应后,心肌受损程度仍可能进一步加重,对心肌造成二次损害,缺血再灌注(I/R)损伤心肌可占全部梗死心肌面积的50%。1960年Jennings等首次提出
Cell Rep Med:南方医科大学刘克玄团队揭示肠道菌群代谢物影响肠源性脓毒症的易感性
发生在创伤、感染、休克及肠梗阻、体外循环手术等临床现象中,其不仅引起肠损伤,还因肠屏障破坏后菌群失调、内毒素移位,导致脓毒症及肠外多器官功能不全甚至衰竭。肠源性脓毒症是一种特殊类型的脓毒症,是由肠道损伤或隐匿性肠道感染引起的一种全身性反应,其中肠 I/R 是研究肠源性脓毒症发生机制和防治策略的有效模型。然而,肠源性脓毒症的发生机制亟待澄清,亦无有效的防治措施。因此,探讨肠源性脓毒症的发生机制及防治措施,具有重要的意义。 该团队通过建立肠 I/R 诱导的肠源性脓毒症小鼠模型,依据小鼠脓毒症损伤
口袋位置。口袋的坐标为:34.3356,14.9412,26.9615我们修改下对接参数,新的参数如下:receptor = r.pdbqtligand = nap.pdbqtcenter_x = 34.3356center_y = 14.9412center_z = 26.9615size_x = 30.0size_y = 30.0size_z = 30.0energy_range = 4exhaustiveness = 10num_modes = 10最优结果与真实模型的 RMSD 为 1.795











