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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
55
- 英文名：
Phlorizin
- 保质期：
详见说明书
- 供应商：
上海一研
- 保存条件：
低温
- 规格：
1mL(10mM)|1g|5g
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中文名称：hSGLT1和hSGLT2抑制剂(Phlorizin)
英文名称：Phlorizin
产品规格：1mL(10mM)|1g|5g
发货周期：1～3天
Phlorizin是天然产物，是经典的hSGLT1和hSGLT2的抑制剂，Ki分别为300nM和39nM。
注：本品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他用途！
CAS号：60-81-1
别名：Floridzin;NSC 2833
纯度：95.33%
分子式：C₂₁H₂₄O₁₀
分子量：436.41
储存条件：-20℃，有效期2年，溶入溶剂后-20℃请尽量在一个月内使用。
hSGLT1和hSGLT2抑制剂(Phlorizin) 使用注意事项
1． 微量试剂取用前请离心集液。
2． Annexin V-EGFP，Propidium Iodide（PI）避光保存及使用。
3． Propidium Iodide （PI）有毒，操作时请戴手套。
4． 本试剂盒适用于检测活细胞，流式细胞仪检测时，细胞数量不应低于1×105，，不推荐用于检测组织样本。
5． 推荐使用悬浮培养细胞。如果是贴壁细胞，需用不含EDTA的胰酶消化，如消化不当，可能引起假阳性，而用细胞刮子会造成细胞粘连成团，而影响检测。可将胰酶消化后细胞的保存在含2%BSA的PBS中，防止进一步的损伤。
6． 细胞固定后可能导致荧光的淬灭，请不要固定样品。
7． 因检测细胞的类型、凋亡诱导剂种类、使用的检测仪器不同，因而流式检测的荧光补偿也不同，因此建议每次检测均需使用未经凋亡诱导处理的细胞作为对照，进行荧光补偿的调节。
使用说明
1. 细胞的增殖和细胞毒实验，一般可在96孔细胞培养板中进行。
2. 每孔加入100微升细胞悬液。细胞的数量取决于实验目的和培养时间。增殖实验每孔通常加入103个以上数量的细胞；细胞毒性实验每孔至少加入5x103个或以上数量的细胞（具体每孔所用的细胞的数目，需根据细胞的大小，细胞增殖速度的快慢等因素确定）。
3. 接种的细胞按照实验需要，送入细胞培养箱进行培养。增殖实验通常要给予0-10微升特定的药物或生长因子进行刺激。细胞毒实验通常要给予0-10微升抑制因子或细胞毒药物；
4．培养结束后，每孔加入20微升MTT溶液，在细胞培养箱内继续孵育3－6小时；
5．孵育结束后，每孔加入100微升Formanzan溶解液，在37℃细胞培养箱内再继续孵育，直至在镜下观察formazan全部溶解。通常37℃孵育4小时左右，紫色结晶会全部溶解。如果紫色结晶较小较少，溶解的时间会短一些。如果紫色结晶较大较多，溶解的时间会略长。
6. 在570nm测定吸光度。如无570nm滤光片， 560-600nm范围的滤光片均可使用。
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hSGLT1和hSGLT2抑制剂(Phlorizin) Anti-ANKHD1抗体英文名称：Annexin V-EGFP/PI Apoptosis Detection Kit
产品规格：20 rxn
发货周期：1～3天
Annexin V-EGFP/PI细胞凋亡检测试剂盒（Annexin V-EGFP/PI Apoptosis Detection Kit）是用EGFP标记了的Annexin V作为探针，来检测细胞早期凋亡的发生，可用荧光显微镜、流式细胞仪或其他荧光检测设备进行检测。
其检测原理为：在正常的活细胞中，磷脂酰丝氨酸（phosphotidylserine，PS）位于细胞膜的内侧，但在早期凋亡的细胞中，PS 从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面，暴露在细胞外环境中。Annexin-Ⅴ（膜联蛋白-V）是一种分子量为35-36KD的Ca2+ 依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力结合。可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。
另外，本试剂盒中还提供了碘化丙啶（Propidium Iodide，PI）用来区分存活的早期细胞和坏死或晚期凋亡细胞。PI是一种核酸染料，它不能透过正常细胞或早期凋亡细胞的完整的细胞膜，但可以透过凋亡晚期和坏死细胞的细胞膜而使细胞核染红。因此，将Annexin V与PI联合使用时，PI 则被排除在活细胞（Annexin V-/PI-）和早期凋亡细胞（Annexin V+/PI-）之外，而晚期凋亡细胞和坏死细胞同时被EGFP 和PI 结合染色呈现双阳性（Annexin V+/PI+）。
产品组份：
Annexin V-EGFP———————100 μl
PI Staining Solution————100 μl
1×Binding Buffer——————8 ml
储存条件：4℃，有效期一年。
15-Hydroxydehydroabietic acid分子式：C20H28O3性状：Powder纯度：97.0%
9β,13β-Epidioxyabiet-8(14)-en-18-oic acid分子式：C20H30O4性状：Powder纯度：98.0%
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中文名称：hSGLT1和hSGLT2抑制剂(Phlorizin)
英文名称：Phlorizin
产品规格：1mL(10mM)|1g|5g
发货周期：1～3天
Phlorizin是天然产物，是经典的hSGLT1和hSGLT2的抑制剂，Ki分别为300nM和39nM。
注：本品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他用途！
CAS号：60-81-1
别名：Floridzin;NSC 2833
纯度：95.33%
分子式：C₂₁H₂₄O₁₀
分子量：436.41
储存条件：-20℃，有效期2年，溶入溶剂后-20℃请尽量在一个月内使用。
hSGLT1和hSGLT2抑制剂(Phlorizin) 使用注意事项
1． 微量试剂取用前请离心集液。
2． Annexin V-EGFP，Propidium Iodide（PI）避光保存及使用。
3． Propidium Iodide （PI）有毒，操作时请戴手套。
4． 本试剂盒适用于检测活细胞，流式细胞仪检测时，细胞数量不应低于1×105，，不推荐用于检测组织样本。
5． 推荐使用悬浮培养细胞。如果是贴壁细胞，需用不含EDTA的胰酶消化，如消化不当，可能引起假阳性，而用细胞刮子会造成细胞粘连成团，而影响检测。可将胰酶消化后细胞的保存在含2%BSA的PBS中，防止进一步的损伤。
6． 细胞固定后可能导致荧光的淬灭，请不要固定样品。
7． 因检测细胞的类型、凋亡诱导剂种类、使用的检测仪器不同，因而流式检测的荧光补偿也不同，因此建议每次检测均需使用未经凋亡诱导处理的细胞作为对照，进行荧光补偿的调节。
使用说明
1. 细胞的增殖和细胞毒实验，一般可在96孔细胞培养板中进行。
2. 每孔加入100微升细胞悬液。细胞的数量取决于实验目的和培养时间。增殖实验每孔通常加入103个以上数量的细胞；细胞毒性实验每孔至少加入5x103个或以上数量的细胞（具体每孔所用的细胞的数目，需根据细胞的大小，细胞增殖速度的快慢等因素确定）。
3. 接种的细胞按照实验需要，送入细胞培养箱进行培养。增殖实验通常要给予0-10微升特定的药物或生长因子进行刺激。细胞毒实验通常要给予0-10微升抑制因子或细胞毒药物；
4．培养结束后，每孔加入20微升MTT溶液，在细胞培养箱内继续孵育3－6小时；
5．孵育结束后，每孔加入100微升Formanzan溶解液，在37℃细胞培养箱内再继续孵育，直至在镜下观察formazan全部溶解。通常37℃孵育4小时左右，紫色结晶会全部溶解。如果紫色结晶较小较少，溶解的时间会短一些。如果紫色结晶较大较多，溶解的时间会略长。
6. 在570nm测定吸光度。如无570nm滤光片， 560-600nm范围的滤光片均可使用。
催吐萝芙木定 生长分因子2(GDF2) 订购|咨询 规格： HPLC≥98%;10mg
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柚皮苷二氢查尔 生长分因子3(GDF3) 订购|咨询 规格： HPLC≥98%;20mg
儿茶素没食子 生长分因子5(GDF5) 订购|咨询 规格： HPLC≥98%;10mg
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延胡索素 生长因子受体结合蛋白2(Grb2) 订购|咨询 规格： HPLC≥98%;5mg
长春质碱 生长关联蛋白43(GAP43) 订购|咨询 规格： HPLC≥98%;20mg
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其检测原理为：在正常的活细胞中，磷脂酰丝氨酸（phosphotidylserine，PS）位于细胞膜的内侧，但在早期凋亡的细胞中，PS 从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面，暴露在细胞外环境中。Annexin-Ⅴ（膜联蛋白-V）是一种分子量为35-36KD的Ca2+ 依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力结合。可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。
另外，本试剂盒中还提供了碘化丙啶（Propidium Iodide，PI）用来区分存活的早期细胞和坏死或晚期凋亡细胞。PI是一种核酸染料，它不能透过正常细胞或早期凋亡细胞的完整的细胞膜，但可以透过凋亡晚期和坏死细胞的细胞膜而使细胞核染红。因此，将Annexin V与PI联合使用时，PI 则被排除在活细胞（Annexin V-/PI-）和早期凋亡细胞（Annexin V+/PI-）之外，而晚期凋亡细胞和坏死细胞同时被EGFP 和PI 结合染色呈现双阳性（Annexin V+/PI+）。
产品组份：
Annexin V-EGFP———————100 μl
PI Staining Solution————100 μl
1×Binding Buffer——————8 ml
储存条件：4℃，有效期一年。
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文献和实验相关实验
Spectroscopic Methods for the Determination of Protein Interactions
. Xia, X., Lin, J.T., and Kinne, R.K. 2003. Binding of phlorizin to the isolated C‐terminal extramembranous loop of the Na+/glucose cotransporter assessed by intrinsic tryptophan fluorescence. Biochemistry 42
技术资料暂无技术资料 索取技术资料
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