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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
444
- 英文名:
High purity Plasmid Extraction Kit
- 保质期:
12个月
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
- 保存条件:
RT
- 规格:
100次|200次
尽管该试剂盒可以抽提较大的质粒(>10kb),但我们不推荐使用。如果一定要使用,请参考以下方法:加大菌体使用量(使用5~10mL过夜培养物),同时按照比例增加P1、P2、P3的用量;洗脱缓冲液应在70℃预热,在吸附和洗脱时可以适当的延长时间,以增加提取效率,其它步骤相同。
本试剂盒使用了Lysis Dye,菌体裂解是否完全一目了然。由于判断菌体裂解和中和是否彻底更主要取决于操作者的经验,所以我们增加了Lysis Dye(一种能使裂解/中和体系变换颜色的试剂)来帮助观察裂解/中和的程度。加入P1后,Lysis Dye使菌液变为浑浊的红色;加入P2后,Lysis Dye立即使溶液变为澄清的红色,裂解是否完全只要观察红色溶液是否澄清,如果红色非常均一,表明裂解充分;在完全裂解的体系中加入P3混匀后,体系立即变为黄色,任何红色的残留表明没有完全混匀或者中和不彻底。
本试剂盒增加了去蛋白液PD,能更加彻底地去除蛋白污染,得到纯度更高的质粒。
试剂盒组成:
| 组分 | 100次 | 200次 | 保存 |
| RNase A | 300μL | 600μL | -20℃ |
| Lysis Dye | 600μL | 2×600μL | 室温 |
| 溶液P1 | 30mL | 60mL | 室温 |
| 溶液P2 | 30mL | 60mL | 室温 |
| 溶液P3 | 40mL | 80mL | 室温 |
| 去蛋白液PD | 60mL | 120mL | 室温 |
| 漂洗液PW | 25mL | 2×25mL | 室温 |
| 洗脱缓冲液EB | 15mL | 15mL | 室温 |
| 吸附柱CP及收集管 | 100套 | 200套 | 室温 |
保存:室温(25℃左右)干燥条件下,可保存1年;更长时间的保存可置于2~8℃。2~8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,应在使用前置于37℃下溶解沉淀至溶液澄清后再使用。单独包装的RNase A在-20℃可稳定保存1年以上。加入RNase A后的溶液P1应置于2~8℃保存,可稳定保存半年。
准备工作:
- 将试剂盒附带的RNase A全部加入到溶液P1中(如15mL P1中加入150μL RNase A),混匀后4℃贮存。
- 按照标签所示在漂洗液PW中加入无水乙醇,混匀后盖紧瓶盖后室温贮存备用。
- 每次使用前请检查溶液P2,溶液P3和去蛋白液PD是否有沉淀生成,如果出现沉淀,37℃温浴至沉淀溶解后再使用。
使用方法:
一、使用Lysis Dye的标准操作步骤
如非指出,所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
- 取1~5mL过夜培养的菌液加入离心管中,10000g离心1分钟,尽量吸除上清。
注:菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中。 - 向菌体沉淀的离心管中加入250μL溶液P1(请先检查是否已加入RNaseA)和5μL Lysis Dye,使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀,此时溶液为浑浊的红色。
注:如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。 - 加入250μL溶液P2,温和地上下翻转6~8次使菌体充分裂解,此时溶液变为澄清的红色。
注:温和地混合,不要剧烈震荡,以免污染基因组DNA;所用时间绝对不应超过5分钟,以免质粒受到破坏;红色溶液应该透明均一,如有浑浊红色颗粒,表明裂解不充分,会大大降低质粒提取效率。 - 加入350μL溶液P3,立即温和地上下翻转,充分混匀,混匀充分的标志是溶液完全呈透明的黄色,如有可见红色,说明混匀不彻底。10000g离心10分钟。
注:P3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。 - 小心地将上清转移到吸附柱CP中(吸附柱放入收集管中),10000g离心30~60秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP重新放回收集管中。
- 向吸附柱CP中加入500μL去蛋白液PD,10000g离心30秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP重新放回收集管中。
- 向吸附柱CP中加入700μL漂洗液PW(请先检查是否已加入无水乙醇),10000g离心30~60秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP重新放回收集管中。
- 向吸附柱CP中加入500μL漂洗液PW,10000g离心30~60秒,倒掉收集管中的废液。
- 将吸附柱CP置于重新放回收集管中,10000g离心2分钟。
注:此步骤目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,绝对不可省略,因为漂洗液中乙醇的残留会影响后续实验(酶切,PCR等)。 - 将吸附柱CP置于一个干净的1.5mL离心管中,向吸附膜的中央部位悬空滴加50~100μL洗脱缓冲液EB,室温放置2分钟,10000g离心2分钟将质粒溶液收集到离心管中,-20℃保存。
注:
● 为了增加质粒的回收效率,可将得到的洗脱液重新加入离心吸附柱中,再次离心收集。
● 洗脱缓冲液体积不应少于50μL,体积过小影响回收效率。
● 洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0~8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率。
二、不使用Lysis Dye的标准操作步骤
如非指出,所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
- 取1~5mL过夜培养的菌液加入离心管中,10000g离心1分钟,尽量吸除上清。
注:菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中。 - 向菌体沉淀的离心管中加入250μL溶液P1(请先检查是否已加入RNaseA),使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。
注:如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。 - 加入250μL溶液P2,温和地上下翻转6~8次使菌体充分裂解。
注:温和地混合,不要剧烈震荡,以免污染基因组DNA;所用时间绝对不应超过5分钟,以免质粒受到破坏。 - 加入350μL溶液P3,立即温和地上下翻转6~8次,充分混匀,此时会出现白色絮状沉淀。10000g离心10分钟。
注:P3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。 - 小心地将上清转移到吸附柱CP中(吸附柱放入收集管中),10000g离心30~60秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP重新放回收集管中。
- 向吸附柱CP中加入500μL去蛋白液PD,10000g离心30秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP重新放回收集管中。
- 向吸附柱CP中加入700μL漂洗液PW(请先检查是否已加入无水乙醇),10000g离心30~60秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP重新放回收集管中。
- 向吸附柱CP中加入500μL漂洗液PW,10000g离心30~60秒,倒掉收集管中的废液。
- 将吸附柱CP置于收集管中,10000g离心2分钟。
注:此步骤目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,绝对不可省略,因为漂洗液中乙醇的残留会影响后续实验(酶切,PCR等)。 - 将吸附柱CP置于一个干净的1.5mL离心管中,向吸附膜的中央部位悬空滴加50~100μL洗脱缓冲液EB,室温放置2分钟,10000g离心2分钟将质粒溶液收集到离心管中,-20℃保存。
注:
● 为了增加质粒的回收效率,可将得到的洗脱液重新加入离心吸附柱中,再次离心收集。
● 洗脱缓冲液体积不应少于50μL,体积过小影响回收效率。
● 洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0~8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率。
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