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血液RNA提取试剂盒(含DNase I)

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  • ¥380 - 3800
  • 百奥莱博
  • WE0197-LXS
  • 北京
  • 2025年07月07日
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      453

    • 英文名

      RNAtiqu Blood RNA Extraction Kit(DNase I)

    • 保质期

      1个月

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      阴凉干燥

    • 规格

      50次

      本试剂盒适用于从新鲜全血(用柠檬酸盐、EDTA或肝素等抗凝剂处理过的血液样品)中提取总RNA,可处理多至1.5ml的全血,洗脱得到分子量大于200 bp的高纯度RNA,多个样品可以在1小时内同时完成。本产品无需CsCl纯化的超离心步骤和LiCl或乙醇沉淀,不含有苯酚或氯仿等有毒溶剂,经过纯化的RNA有效去除血红素、肝素等酶抑制剂和污染物,可直接用于各种分子生物学常规实验,如RT-PCR、Northern Blot、Dot Blot、体外翻译等实验。

    试剂盒组成
    组份 50次
    DNase I 1000 U
    10×Reaction Buffer 1000μl
    Buffer RBL(10×) 60ml
    Buffer RL 35ml
    Buffer RW1 40ml
    Buffer RW2(浓缩液) 11ml
    RNase-Free Water 10ml
    过滤柱FL及收集管 50套
    吸附柱RM及收集管 50套
    RNase-Free离心管(1.5ml) 50个

    保存条件:DNase I及10×Reaction Buffer -20℃保存,其它组分室温(15~30℃)。

    自备试剂:β-巯基乙醇、无水乙醇。

    实验前准备及重要注意事项
    1、预防RNase污染,应注意以下几方面:
    1)使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
    2)配制溶液应使用无RNase的水。
    3)操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。
    2、样品应避免反复冻融,否则影响提取RNA提取得率和质量。样品在Buffer RL中,可于-70℃保存一个月。
    3、Buffer RL在使用前请加入β-巯基乙醇,1ml Buffer RL加10μl β-巯基乙醇。加入β-巯基乙醇的Buffer RL室温可保存1个月。
    4、第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer RW2中加入无水乙醇。
    5、使用前请检查Buffer RL是否出现结晶或者沉淀,可置于于56℃水浴重新溶解。
    6、本试剂盒不能用于加入抗凝剂的冷冻血液样本RNA的提取。
    7、10×Buffer RBL需在使用前将溶液用无RNase的水进行10倍稀释,稀释后置于2~8℃保存。

    操作步骤
    1、向新鲜的抗凝全血样本中,加入5倍血液样本体积的1×Buffer RBL(请于使用前用无RNase水将10×Buffer RBL稀释10倍),轻轻涡旋或颠倒混匀。冰上孵育10-15分钟,孵育过程中混匀两次。
    注意:孵育过程中浑浊的悬液会变成透明,证明红细胞被裂解,必要时可以把孵育时间延长至20分钟。
    2、4℃ 2,100 rpm(~400×g)离心10分钟,小心吸弃上清。
    3、向以上沉淀中加入2倍血液样本体积的1×Buffer RBL(请于使用前用无RNase水将10×Buffer RBL稀释10倍),轻轻涡旋,充分重悬沉淀。
    4、4℃ 2,100 rpm离心10分钟,小心并彻底吸弃上清。
    注意:此步一定要完全去除上清否则影响裂解导致RNA产量下降。
    5、向沉淀中加入Buffer RL(使用前检查是否已经加入β-巯基乙醇),具体加量按照下表进行,涡旋混匀。
    注意:如果血液不是健康人的全血,需要根据血液中白细胞的数量来确定所需Buffer RL的加入量。完全混匀后细胞应完全裂解,块状沉淀消失。
    Buffer RL(μl) 健康人类全血(ml) 白细胞数量
    350 小于0.5 多至2×106
    600 0.5-1.5 2×106 至1×107

    6、将以上所得液体转移到已装入收集管的过滤柱中,12000rpm(~~13400×g)离心2分钟,收集滤液,弃掉过滤柱。
    7、向滤液中加入1倍体积(600μl或350μl)的70%乙醇(无RNase水配制),混匀。
    注意:加入乙醇后可能会产生沉淀,不会影响后续实验。
    8、将上步所得溶液全部加入到吸附柱中(已装入收集管),若一次不能加完溶液,可分多次转入。12000rpm离心15秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    9、向吸附柱中加入350μl Buffer RW1,12000rpm离心1分钟,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    10、配制DNase I 混合液:取52μl RNase-Free Water,向其中加入8μl 10×Reaction Buffer和20μl DNase I(1 U/μl),混匀, 配制成终体积为80μl的反应液。
    11、向吸附柱中直接加入80μl DNase I 混合液,20-30℃孵育15分钟。
    12、向吸附柱中加入350μl Buffer RW1,12000rpm离心1分钟,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    13、向吸附柱中加入500μl Buffer RW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心15秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    14、重复步骤13。
    15、12000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干。
    注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
    16、将吸附柱置于一个新的RNase-Free的1.5ml离心管(自备)中,向吸附柱的中间部位加入30-50μl RNase-Free Water,室温放置1分钟,12000rpm离心1分钟,收集RNA溶液,-70℃保存RNA,防止降解。
    注意:
    1)RNase-Free Wate体积不应小于30μl,体积过小影响回收率。
    2)如果要提高RNA的产量,可用30-50μl新的RNase-Free Water再次洗脱,室温放置1分钟,12000rpm离心1分钟。
    3)如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,室温放置1分钟,12000rpm离心1分钟。

    储存条件:室温(15~30℃)。

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