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谷胱甘肽还原酶(GR)检测试剂盒 微量法

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  • ¥500
  • Solarbio已认证
  • 北京
  • BC1165
  • 2025年07月15日
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    • 详细信息
    • 文献和实验
    • 技术资料
    • 保存条件

      2-8℃

    • 保质期

      6个月

    • 英文名

      Glutathione Reductases(GR) Activity Assay Kit

    • 库存

      99

    • 供应商

      北京索莱宝科技有限公司

    • CAS号

      BC1165-100T/96S

    • 规格

      100管/96样


    谷胱甘肽还原酶(GR)活性检测试剂盒说明书
    微量法
    注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。
    货号:BC1165
    规格:100T/96S
    产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
    试剂名称 规格 保存条件
    试剂一 液体125 mL×1瓶 2-8℃保存
    试剂二 粉剂×1 2-8℃保存
    试剂三 粉剂×1 2-8℃保存
    溶液的配制:
    1. 试剂二:临用前加入1.5mL蒸馏水溶解备用,2-8℃可保存4周;
    2. 试剂三:试剂存于试剂瓶内玻璃瓶中;临用前加入3 mL蒸馏水溶解备用,-20℃可分装保存4周,避免反复冻融。
    产品说明:
    GR(EC1.8.1.7Glutathione ReductaseGR是广泛存在于真核和原核生物中的一种黄素蛋白氧化还原酶,GR是谷胱甘肽氧化还原循环的关键酶之一(通常昆虫中GR被TrxR取代)。GR催化NADPH还原*生成GSH,有助于维持体内GSH/*比值。GR在氧化胁迫反应中对活性氧清除起关键作用,此外GR还参与抗坏血酸-谷胱甘肽循环途径。
    GR能催化NADPH还原*再生GSH,同时NADPH脱氢生成NADP+;NADPH在340nm有特征吸收峰,相反NADP+在该波长无吸收峰;通过测定340nm吸光度下降速率来测定NADPH脱氢速率,从而计算GR活性。
    注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
    需自备的仪器和用品:
    紫外分光光度计/酶标仪、低温离心机、水浴锅/恒温培养箱、移液器、匀浆器/研钵/细胞超声破碎仪、微量石英比色皿/96孔UV板、冰和蒸馏水。
    操作步骤:
    一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
    1. 组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)15~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL试剂一)进行冰浴匀浆。10000rpm4℃离心10min,取上清置冰上待检测。
    2. 细菌、细胞:按照细胞数量(104个):试剂一体积(mL)为500~10001的比例(建议500万细胞加入1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3s,间隔7s,总时间3min),然后10000rpm4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。
    3. 血清(血浆)等液体:直接测定。
    二、测定步骤
    1. 分光光度计或酶标仪预热30 min以上,调节波长到340nm,蒸馏水调零。
    2. 根据样本量取部分试剂一置于37℃中预热15min以上。
    3. 操作表:(在微量石英比色皿或96孔UV板中加入下列试剂)
    试剂名称(μL 测定管 空白管
    试剂二 10 10
    试剂三 20 20
    样本 20 -
    试剂一 150 170
    将上述试剂分别加入微量石英比色皿或96孔板后迅速吹打混匀,记录第10s340nm的吸光值A1A1),迅速置于37℃水浴或培养箱3min(酶标仪有控温功能的可以调节温度至37℃),拿出迅速擦干测定3min10s时的吸光值A2A2),计算ΔA空白管=A1-A2ΔA测定管=A1-A2
        空白管只需测1-2次。
    三、GR活性计算
    a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下
    (1)按样本蛋白浓度计算
    活性单位定义:在37℃,pH 8.0条件下,每毫克蛋白每分钟催化1μmol NADPH氧化为一个酶活力单位。
    GR酶活(U/mg prot)= [ (ΔA测定管-ΔA空白管)÷(ε×d)×V反总×106] ÷(Cpr×V样)÷T
    =0.536×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷Cpr
    (2)按样本质量计算
    活性单位定义:在37℃,pH 8.0条件下,每克样本每分钟催化1μmol NADPH氧化为一个酶活力单位。
    GR酶活(U/g 质量)= [ (ΔA测定管-ΔA空白管)÷(ε×d)×V反总×106] ÷(V样÷V样总×W)÷T
    =0.536×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷W
    (3)按细胞数量计算
    活性单位定义:在37℃,pH 8.0条件下,每104个细胞每分钟催化1μmol NADPH氧化为一个酶活单位。
    GST活性(U/104 cell)=[ (ΔA测定管-ΔA空白管ε×d×106×V反总]÷(N×V÷V样总)÷T
        =0.536×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷N
    (4)按液体体积计算
    活性单位定义:在37℃,pH 8.0条件下,每毫升液体每分钟催化1μmol NADPH氧化为一个酶活单位。
    GST活性(U/mL)= [(ΔA测定管-ΔA空白管ε×d×106×V反总]÷V÷T
    = 0.536×(ΔA测定管-ΔA空白管)
    εNADPH摩尔消光系数6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cmV反总:反应体系总体积,200μL=2×10-4L;106:单位换算系数,1mol=1×106μmolCpr:上清液蛋白浓度,mg/mLW:样本质量,gV样:加入反应体系中的样本体积,20μL=2×10-2mL;V样总:样本总体积,1mLT:反应时间,3min;N:细胞数量,以万计。
    b.使用96孔板测定的计算公式如下
    (1)按蛋白浓度计算
    活性单位定义:在37℃、pH 8.0条件下,每毫克蛋白每分钟催化1μmol NADPH氧化为一个酶活力单位。
    GR酶活(U/mg prot)=[ (ΔA测定-ΔA空白)÷(ε×d)×V反总×106]÷(Cpr×V样)÷T
       =0.893×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷Cpr

    (2)按样本质量计算
    活性单位定义:在37℃、pH 8.0条件下,每克样本每分钟催化1μmol NADPH氧化为一个酶活力单位。
    GR酶活(U/g质量)=[(ΔA测定管-ΔA空白管)÷(ε×d)×V反总×106]÷(V样÷V样总×W)÷T
              =0.893×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷W
    (3)按细胞数量计算:
    活性单位定义:在37℃、pH 8.0条件下,每104个细胞每分钟催化1μmol NADPH氧化为一个酶活单位。
    GST活性(U/104 cell)=[ (ΔA测定管-ΔA空白管ε×d×106×V反总]÷(N×V÷V样总)÷T
        =0.893×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷N
    (4)按液体体积计算
    活性单位定义:在37℃、pH 8.0条件下,每毫升液体每分钟催化1μmol NADPH氧化为一个酶活单位。
    GST活性(U/mL)= [(ΔA测定管-ΔA空白管ε×d×106×V反总]÷V÷T
    = 0.893×(ΔA测定管-ΔA空白管)
    εNADPH摩尔消光系数6.22×103L/mol/cm;d96孔板光径,0.6cmV反总:反应体系总体积,200μL=2×10-4L;106单位换算系数,1mol=1×106μmolCpr:上清液蛋白浓度,mg/mLW:样本质量,gV样:加入反应体系中的样本体积,20μL =2×10-2mL;V样总:样本总体积,1mL;T:反应时间,3minN:细胞数量,以万计。
    注意事项:
    1. 样本处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力,匀浆液避免反复冻融;
    2. 测定前须先用1-2个样做预实验,哺乳动物组织一般须用试剂一稀释2-5倍;
    3. 由于试剂一中含有一定浓度的蛋白(约0.1mg/mL),所以在测定样本蛋白浓度时需要减去试剂一本身的蛋白含量。
    实验实例:
    1. 取0.1g桃树叶片加入1.0 mL试剂一,冰上充分研磨,10000rpm 4℃离心10min,取上清液稀释4倍后按测定步骤检测,用微量石英比色皿测得ΔA测定管=A1-A2=1.0765-0.626=0.4505ΔA空白管=A1-A2=0,按样本质量计算酶活得:
    GR酶活(U/g 质量)=0.536×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷W×4(稀释倍数)=9.66 U/g 质量。
    1. 取0.1g大鼠肝脏组织加入1.0 mL试剂一,冰上充分研磨,10000rpm 4℃离心10min,取上清液稀释8倍后按测定步骤检测,用微量石英比色皿测得ΔA测定管=A1-A2=0.9916-0.5632=0.4284ΔA空白管=A1-A2=0,按样本质量计算酶活得:
    GR酶活(U/g 质量)=0.536×(ΔA测定管-ΔA空白管)÷W×8(稀释倍数)=18.37 U/g 质量。
    相关发表文献:
    1. Hua Li,Lanying Wang,Yanping Luo. Composition Analysis by UPLC-PDA-ESI ()-HRMS and Antioxidant Activity Using Saccharomyces cerevisiae Model of Herbal Teas and Green Teas from Hainan. Molecules. October 2018;(IF3.06)
    2. Zeyong Zhang,Huanhuan Liu,Ce Sun,et al. A C2H2 zinc-finger protein OsZFP213 interacts with OsMAPK3 to enhance salt tolerance in rice. Journal of Plant Physiology.October 2018;(IF2.825)
    3. Li S, Tian Y, Wu K, et al. Modulating plant growth–metabolism coordination for sustainable agriculture[J]. Nature, 2018, 560(7720):595-600.
    参考文献:
    1. Demiral T, Türkan I. Comparative lipid peroxidation, antioxidant defense systems and proline content in roots of two rice cultivars differing in salt tolerance[J]. Environmental and experimental botany, 2005, 53(3): 247-257.
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    图标文献和实验
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    The alleviation mechanisms of cadmium toxicity in Broussonetia papyrifera by arbuscular mycorrhizal symbiosis varied with different levels of cadmium stress点击查看
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    IF13.6000PMID37478589
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