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Ni琼脂糖凝胶北京现货

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  • 百奥莱博
  • WE0272-LVS
  • 北京
  • 2025年07月16日
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      308

    • 英文名

      Ni-Agarose Resin

    • 保质期

      长期

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      2~8℃

    • 规格

      10ml

    特别提示:包括Ni琼脂糖凝胶在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!


    产品名称:Ni琼脂糖凝胶
    英文名称:Ni-Agarose Resin
    产品货号:WE0272
    产品规格:10ml

      该镍柱纯化系统对6×His-tag蛋白具有显著特异吸附能力,能够高效一步纯化带有6个组氨酸亲和标签的蛋白。该系统具有4个Ni2+螯合位点,较只有3个螯合位点的Ni-IDA结合Ni2+更为牢固,有效防止纯化过程中Ni2+脱落且增强对His标签蛋白的结合能力,提高纯化效率。较高的基团密度,大大提高了蛋白载量。该系统在天然或变性条件下,对来源于各种表达系统(如杆状病毒,哺乳细胞,酵母以及细菌)中的His标签蛋白,均有很好的纯化效果。本产品已螯合镍离子,可直接使用,方便,快捷。

    支持物:CL-6B琼脂糖凝胶
    载量:20-30 mg His标签蛋白/ml填料
    粒径:50-160μM

    注意事项
    1、缓冲液中不建议使用 β-巯基乙醇、DTT或EDTA。
    2、整个纯化过程中切忌凝胶脱水变干。
    3、为提高纯化效率,首先确定Binding Buffer和Elution Buffer中咪唑的zuì佳使用浓度。可以使用线性或梯度浓度的咪唑(20-500 mM)洗脱蛋白,并通过SDS-PAGE或Western Blotting来检测目的蛋白的纯度。
    4、为避免柱子被堵塞,请使用高纯度的试剂配制缓冲液,并通过0.45μM过滤器过滤。建议将裂解液进行离心,或者使用0.45μM过滤器过滤。
    5、柱再生时,保证每步洗完后都要用足够的去离子水冲洗至中性。

    使用方法

    I 缓冲液的准备
    1、可溶性蛋白纯化缓冲液配方:
    成分 Tris-HCl(PH 7.9) 咪唑 氯化钠
    Soluble Binding Buffer 20 mM 10 mM 0.5 M
    Soluble Elution Buffer 20 mM 500 mM 0.5 M

    2、包涵体蛋白纯化缓冲液配方:
    成分 Tris-HCl(PH 7.9) 咪唑 氯化钠 尿素/盐酸胍
    Inclusion Body Binding Buffer 20 mM 5 mM 0.5 M 8 M/6 M
    Inclusion Body Elution Buffer 20 mM 500 mM 0.5 M 8 M/6 M


    II 组装层析柱
    1、将Ni-Agarose Resin填料混匀后加入层析柱,室温静置10分钟,待凝胶与溶液分层后,把底部的出液口打开,让乙醇通过重力作用缓慢流出。
    注意:
    1)填料的上层是乙醇保护层,将填料和乙醇一起混匀,以每ml填料纯化20-30mg His标签蛋白计算,取需要的填料与乙醇的混合液加入层析柱。
    2)本实验是通过重力作用使溶液流出,如果溶液不流出,可以给柱子一个外力,例如用大拇指对柱口轻轻按压一下,迫使其流出。
    2、向装填好的柱中加入5倍柱体积的去离子水将乙醇冲洗干净后,再用10倍柱体积的Binding Buffer平衡柱子,平衡结束后即可上样。
    注意:柱体积指的是填料的体积。

    III 可溶性蛋白的纯化
    1、收集菌体后,每100 mg菌体(湿重)加入1-5ml细菌裂解液,超声裂解菌体。10000×g离心10分钟后,收集上清。
    2、将上清液过柱,流速为10倍柱体积/小时。
    3、使用15倍柱体积的Soluble Binding Buffer冲洗柱子,收集流穿峰。
    4、使用5倍柱体积的Soluble Elution Buffer洗脱,收集洗脱峰。
    5、洗脱后,依次使用3倍柱体积的Soluble Binding Buffer和5倍柱体积的去离子水洗涤柱子,再用3倍柱体积的20%乙醇平衡(乙醇要将填料浸没),封柱后2~8℃保存。

    Ⅳ 包涵体蛋白的纯化
    1、收集菌体后,每100 mg菌体(湿重)加入1-5ml 细菌裂解液,超声裂解菌体。
    2、离心,弃上清,将沉淀重悬于Soluble Binding Buffer 中(如有需要,可进行超声波处理,超声前可加入1-5 mM 磷酸酶抑制剂混合物)。
    3、重复操作2,直至包涵体清洗干净(呈较洁净的乳白色状)。
    4、将沉淀重悬于Inclusion Body Binding Buffer中,冰浴1小时,使包涵体溶解。
    5、10000×g离心20分钟,将上清以孔径为0.45μM的滤膜过滤。
    6、将蛋白溶液负载上柱,流速为10倍柱体积/小时。
    7、使用15倍柱体积的Inclusion Body Binding Buffer冲洗柱子,收集流穿峰。
    8、使用5倍柱体积的Inclusion Body Elution Buffer洗脱,收集洗脱峰。
    9、洗脱后,依次使用3倍柱体积的Inclusion Body Binding Buffer和5倍柱体积的去离子水洗涤柱子,再用3倍柱体积的20%乙醇平衡(乙醇要将填料浸没),封柱后2~8℃保存。
    注意:在纯化包涵体蛋白时,所有缓冲液均含有变性剂,需要降低Binding Buffer中的咪唑浓度(5 mM或更低)。洗脱时,若蛋白在较高pH下洗脱失败,可以选用低pH缓冲液作为洗脱缓冲液(pH6.5,pH5.9或pH4.5)。

    Ⅴ 柱再生
    当填料使用多次后,结合效率会有所下降(表现为流速变慢或填料失去蓝绿色),可以用以下方法再生,提高填料的使用寿命和蛋白质的结合效率。
    1、使用2倍柱体积的6M盐酸胍冲洗后,使用3倍柱体积的去离子水冲洗。
    2、使用1倍柱体积2% SDS冲洗。
    3、依次使用1倍柱体积的25%、50%、75%和5倍柱体积100%乙醇冲洗,再依次使用1倍柱体积的75%、50%、25%的乙醇冲洗。
    4、使用1倍柱体积的去离子水冲洗。
    5、使用5倍柱体积含50 mM EDTA缓冲液(PH8.0)冲洗。
    6、使用3倍柱体积去离子水,3倍柱体积20%乙醇冲洗。
    7、封柱后2~8℃保存。
    8、再次使用前,需首先使用10倍柱体积去离子水冲洗,然后使用5个柱体积的50 mM NiSO4再生,3个柱体积的Binding Buffer平衡。

    储存条件:2~8℃,避免冷冻

    我公司销售的Ni琼脂糖凝胶,Ni-Agarose Resin质量上佳,价格普惠,欢迎广大新老客户踊跃订购。

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