酵母线粒体DNA提取试剂盒

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  • 百奥莱博
  • 北京
  • 2025年07月15日
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    • 英文名

      Yeast Mitochondrial DNA Extraction Kit

    • 保质期

      一年

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      2~8℃可保存一年,DNASEI、RNaseA和蜗牛酶-20℃

    • 规格

      50T|100T

    特别提示:包括酵母线粒体DNA提取试剂盒在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!


    产品名称:酵母线粒体DNA提取试剂盒
    英文名称:Yeast Mitochondrial DNA Extraction Kit
    产品货号:XH006
    产品规格:50T|100T

    本试剂盒用于从酵母中分离出完整而纯化的线粒体DNA。利用差速离心得到比较纯净的线粒体,再利用DNA酶消化和裂解缓冲系统等多步骤去掉核DNA,zuì后得到纯净的线粒体DNA。可用于PCR等对纯度要求较高的实验。

    试剂盒组成:
    组份 50T 100T 保存温度
    DNase I 12mg 22mg -20℃溶解后分装
    RNase A 0.5ml 1ml -20℃保存经常使用可2~8℃放置
    蜗牛酶 500mg 1g -20℃
    β-巯基乙醇 1.0ml 1.0ml RT
    山梨醇缓冲液 30ml 60ml 2~8℃
    原生质体裂解液 100mL 200 mL 2~8℃
    线粒体清洗液 25 mL 50 mL 2~8℃
    DNA酶反应液 6ml 12ml 2~8℃
    线粒体裂解液 10ml 20ml 常温放置,
    如有沉淀可37℃水浴
    蛋白沉淀液 7.5ml 15ml 2~8℃
    核酸助沉剂 0.5ml 1ml 2~8℃
    TE缓冲液 25ml 50ml 2~8℃

    保存条件:2~8℃可保存一年,DNASE I、RNase A和蜗牛酶-20℃保存。使用前,在DNASE I中加入600μl(50T)或者1100μl(100T)的DNA酶反应液,分装后-20℃保存三个月,如果超过三个月,活性可能会降低,请自行订购DNASE I。线粒体裂解液使用前常温保存,如有沉淀可37℃水浴溶解,不影响使用。

    操作步骤:
    准备工作:在DNASE I中加入600μl(50T)或者1100μl(100T)的DNA酶反应液,适当分装后-20℃保存。线粒体裂解液保存于常温,如有沉淀37℃水浴溶解,离心机温度下降到4℃(2~8℃),如无低温离心机,也可以常温离心,并将离心时间减半,但zuì后所得DNA品质及产量可能会有一定影响。

    1.取新鲜培养的1-5ml酵母培养物(约5×107细胞,湿重50mg或者50μl体积)离心后的收集物(4℃,1000×g离心5min)。双蒸水洗一到两次。离心,尽量弃上清。取50μl山梨醇缓冲液洗一次,离心,弃上清。
    2.酵母沉淀用0.5ml山梨醇缓冲液重悬,加入10mg蜗牛酶,再加入5μl β-巯基乙醇,混匀(如果一次提取样本较多,可取0.5ml山梨醇缓冲液重悬,加入10mg蜗牛酶,再加入5μl β-巯基乙醇预混匀,混匀后每管样本加入0.5ml重悬酵母),30℃水浴1-2小时。4℃,1000×g离心5min,弃上清,得到原生质体。将得到的原生质体用0.5ml原生质体裂解液重悬,再次离心,弃上清,得到原生质体。
    3.将得到的原生质体用0.5ml原生质体裂解液重悬,并转移到小容量玻璃匀浆器内,0℃冰浴研磨10~20次;
    4.将研磨物放置合适的离心管,4℃,1000×g离心5min;
    5.取上清,加入一新的离心管中,4℃,16,000×g离心10min。离心后的上清含胞浆成分,可从中提取胞浆蛋白。将上清转移到新离心管,线粒体沉淀在管底。
    6.在线粒体沉淀中加入0.5 mL线粒体清洗液重悬线粒体沉淀,4℃,1000×g离心5min;取上清,加入一新的离心管中,4℃,16,000×g离心10min。弃上清,高纯度的线粒体沉淀在管底;
    7.加入100μl DNA酶反应液重悬线粒体,吹打均匀后,再加入10μl DNASE I溶液(见准备工作),混匀,37℃水浴10min。此步为消化线粒体表面吸付的核DNA。4℃,16,000×g离心5min。尽可能的弃上清,再加入200μl TE重悬线粒体沉淀,4℃,16,000×g离心5min,洗去残留的DNA酶。
    8.得到的沉淀,用200μl TE缓冲液重悬线粒体沉淀,加入10μl RNase A。加入200μl线粒体裂解液,轻轻混匀(不可吹打),放置1~2min,再加入150μl蛋白沉淀液,迅速混匀。4℃,16,000×g离心5min。此步骤可进一步去除核DNA。
    9.取上清,加入一新的离心管中(如用于酶切分析,可加入此步:选用等体积的酚氯fǎng异wù醇25:24:1抽提一次,再用氯fǎng抽提一次,或者直接用氯fǎng抽提两次,一般来说,此步可去掉一些微量蛋白及糖类,但会造成线粒体DNA的损失,因而用于PCR时可省,并不影响后续实验),加入0.6倍体积的异bǐng醇(如无异bǐng醇,可加入2.5倍体积的乙醇沉淀DNA,如离心管太满可分两管)及5-10μl核酸核酸助沉剂,混匀,-20℃沉淀半小时左右(此步可省),4℃,16,000×g离心10min。
    10.弃上清,再加入1ml 70%乙醇清洗,4℃,16,000×g离心5min。重复用70%乙醇洗一次。
    11.弃上清,再次离心1min吸弃上清,不要碰到管底,开盖凉干约5-10min。
    12.加入20-30μl TE缓冲液,轻弹管底,37℃水浴5分钟,线粒体DNA溶解。
    13.进行DNA电泳检测及-20℃保存,进行下步的实验。

    注意事项:
    1.为保证获得完整及尽可能多的线粒体,匀浆条件要示:第一是全程低温操作。第二是快速。第三,如有条件可将匀浆后的碎片在显微镜下观察。
    2.如进行Western Blot和2D-胶电泳,可直接在第6步的沉淀中加入上样缓冲液裂解线粒体。
    3.线粒体DNA本身含量很低,如果电泳检测不到,可加大上样量,用更少量的TE溶解沉淀,或者直接进入PCR检测。
    4.以离心力g计算正确的离心速度,不同的离心机可据此精确计算离心速度。

    一般低温度心机都有离心力显示,如果没有,可以用以下公式简单的换算。
      G=1.11×(10-5)×R×[rpm]2
    G为离心力,一般以g(重力加速度)的倍数来表示;[rpm]2即:转速的平方;R为半径,单位为厘米。

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