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小鼠关节软骨细胞

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  • 钦诚生物
  • 上海
  • 2025年07月12日
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    • 详细信息
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    • 技术资料
    • 细胞类型

      原代细胞

    • 组织来源

      见说明书

    • 物种来源

      小鼠

    • 器官来源

      见说明书

    • 运输方式

      常温运输

    • 生长状态

    • 规格

      5×10⁵cells/T25培养瓶

    收到常温细胞后如何处理? 1、首先,观察细胞培养瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象。若有,请拍照,并及时与技术支持联系。 2、用75%酒精擦拭细胞培养瓶表面,显微镜下观察细胞状态。因运输问题,部分贴壁细胞会有少量从瓶壁脱落;先不要打开培养瓶盖,将细胞置于细胞培养箱内静置培养2-4小时,以便稳定细胞状态。 3、仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如贴壁特性(贴壁/悬浮)、细胞形态、所用基础培养基、血清比例、所需细胞因子、传代比例、换液频率等。 4、静置完成后,取出细胞培养瓶,镜检、拍照,记录细胞状态(所拍照片将作为后续服务依据);建议细胞传代培养后,定期拍照、记录细胞生长状态。 5、贴壁细胞:若细胞生长密度超过80%,可正常传代;若未超过80%,移除细胞培养瓶内培养基,预留5ml左右继续培养,直至细胞密度达80%左右再进行传代操作,瓶盖可稍微拧松。 6、悬浮细胞:将细胞培养瓶内液体全部转移至50ml无菌离心管内,1200rpm离心5min,离心后上清培养基可收集备用,管底细胞沉淀加入5ml培养基吹打、重悬。镜检时,若细胞密度超过80%,可将细胞悬液分至2个细胞培养瓶内培养,补加培养基至5ml;若细胞密度未超过80%,将细胞悬液移至原瓶继续培养,直至细胞密度达266%左右时再进行传代操作。

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    相关实验
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      mammalian oocytes 的研究论文,通过基因编辑技术,他们探索了靶向表观遗传改造是否可以改善哺乳动物的孤雌生殖。他们的研究结果证明,在对 ICRs 进行基因编辑改造之后,能够直接从单个未受精的小鼠卵母细胞产生可存活的足月后代。 本研究报道的哺乳动物的孤雌生殖,是单性生殖的重要科学进步。 图片来源:PNAS 主要研究内容 研究人员指出,由于基因组印记的存在,先前旨在产生哺乳动物孤雌生殖后代的研究工作均失败了。因此,研究人员首先采用了不同的方法尝试去克服这个问题。 他们从雌性小鼠身上取出

    • 正常关节软骨细胞的短期培养

            实验材料:       1.软骨细胞来源:动物材料可选用未成年兔的膝关节、鸡胚胸软骨。人体材料可取自引产胎儿或成年人手术切除的软骨标本;         2.清洗液:不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加100IU/ml青霉素、100μg/ml链霉素,pH7.2;       3.消化液:0.2%胶原酶Ⅱ溶液,用PBS液配制,过滤除菌;       4.培养液:RPMI1640或Ham F12、DMEM培养基,一般在培养液中加20%—30

    • PriCells: 从人关节软骨中分离软骨祖细胞

      . 尼龙膜,40μm筛网; 11. 普通器皿,30ml,或离心管50ml,带圆锥底部便于细胞离心; 12. 解剖刀片,10号; 13. 解剖刀柄,3号; 14. 镊子,2对(1大1小); 15. 矿油凝胶(凡士林); 16. 克隆杯,6mm; 17. 分离软骨用的锁子甲手套; 实验方法: 1. 组织收集和细胞分离; (1) 无菌条件下,用10号解剖刀片小心从软骨下骨下面解剖软骨。将软骨薄片置于含PBSA的9cm Petri培养皿中; (2) 用镊子和刀片仔细将软骨切成1mm3小块

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