丝状真菌线粒体DNAout

丝状真菌线粒体DNAout

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  • ¥2490
  • 钦诚生物
  • QC 130831
  • 上海
  • 2025年07月12日
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      一年

    • 供应商

      钦诚生物

    • 保存条件

      室温

    • 规格

      15次

    线粒体是重要的、负责能量产生的极其重要的细胞器。对丝状真菌线粒体进行生 化,遗传和分子生物学研究都需要先进行线粒体纯化。本产品就是基于密度梯度离心 的,专门用于从丝状真菌叶片中纯化完整线粒体、再从中纯化线粒体 DNA 的试剂盒。 它具有下列特点:
    1. 即用型试剂盒,用户不需要单独配制各种溶液。
    2. 所得线粒体可用于后续的 SDS-PAGE、Western、ELSIA、蛋白组分析、线粒 体 DNA 和线粒体 RNA 纯化。
    3. 本产品足够 15 次线粒体纯化和 15 次线粒体 DNA 提取,每次可处理 10-20g 菌 丝体,能得到 1-5 mg 左右线粒体。
    4. 已经成功用于 Aspergillus candidus、Aspergillus nidulans、Magnaporthe oryzae 、 Neurospora crassa 、 Penicillium chrysogenum 、 Rhizopus stononifer 等丝状真菌

    使用方法 注意:纯化 DNA 提取用的线粒体的要求比纯化功能研究用的线粒体的要求要低,但 整个操作还是最好在冰上或者在冷室进行,所用器皿和溶液最好在 4℃预冷,离心最 好要在 4℃进行,离心力以 g 而不是 rpm 计算。
    一:菌丝的摇瓶培养
    1. 使用合适的丝状真菌培养基,接种孢子至终浓度为 2×10E6/mL。一般 100 mL 液体培养基可以得到 0.8-1.2g 菌丝体,而本方法一次可以处理 10-20g 菌丝体, 故最好一次培养 1-2 升。
    2. 在合适的温度(如 25℃、30℃或 37℃,根据真菌不同而不同)250rpm/min 摇晃培养 16-20 小时。
    3. 用多层纱布或多层过滤纸过滤收集菌丝,用冰浴的自备去离子水洗涤菌丝三次去 除残留的培养基。
    4. 用吸水纸吸干菌丝的水分,称重后立即使用。如果在-80℃或液氮长期放置,线 粒体回收效率将减低。 二:线粒体粗提液的制备
    5. 制备溶液 A 工作液:每次提取需 150mL 溶液 A 工作液,制备方法是将 20mL 溶液 A 和 130mL 自备去离子水混合,冰上预冷即可。
    6. 在 200mL 烧杯中,加入 100mL 预冷的溶液 A 工作液,再加入新制备的菌丝体, 然后全部转移到 Waring 匀浆机(家用果汁匀浆机)中,低速匀浆 10 秒,避免 起泡沫。用玻璃棒把菌丝按入匀浆机底部后,再低速匀浆 10 秒。注意:还可以 选择 Dounce 玻璃匀浆器,Polytron 匀浆机和研磨(加玻璃珠)等方法,但它 们单次处理量一般都较小,需多份处理再汇集。
    7. 用带柄尼龙滤膜过滤匀浆液,用预冷的 200 mL 量筒收集穿透液。
    8. 将剩下的菌丝体转移到 Waring 匀浆机中,再加入 40 mL 预冷的溶液 A 工作液, 低速匀浆 10 秒,用上步的带柄尼龙滤膜过滤,用预冷的 200 mL 量筒收集穿透 液。注意:带柄尼龙滤膜后可反复使用。
    9. 将穿透液分到 4 个预冷的 50 mL 的塑料离心管中(每个约 35 mL)。
    10. 在水平转子离心机上 4℃ 4000 g 离心 10 分钟,小心转移上清(含线粒体的部 分)到 4 个新的离心管中。沉淀含细胞核和未裂解的细胞,可以弃之不用。如果 要用于纯化细胞核 DNA,则可以放-80℃长期保留。
    11. 将含上清液的 4 个离心管在 4℃ 10000 g 离心 20 分钟。
    12. 每个离心管中加 2.5mL 预冷的溶液 A 工作液重悬线粒体沉淀并汇集(共约 10 mL),此为线粒体粗提液。
    13. 如果直接用线粒体粗提液提取线粒体 DNA,容易有细胞核 DNA 污染。具体步骤 是:在水平转子离心机上 4℃ 10000 g 离心 7 分钟,小心弃上清,沉淀为线粒 体,直接用于第三步的线粒体 DNA 提取。
    14. 如果需要高纯度、无污染的线粒体 DNA,则需要用密度梯度离心法将完整的线 粒体和其他细胞碎片进一步分离。具体见下步线粒体精提液的制备。 三:线粒体精提液的制备(密度梯度离心法)
    15. 制备重液和轻液:将 4.1 克成分 B 干粉加到 6.3 mL 溶液 C 中,充分摇晃混匀 得 10 mL 重液。将 4.1 克成分 B 干粉加到 6.3 mL 去离子水中,充分摇晃混匀 得 10mL 轻液。
    16. 在 50 mL 塑料离心管中先加入 10 mL 重液,再在其上轻轻加上 10 mL 轻液, 最后加上第 11 步所得的约 10 mL 线粒体粗提液。
    17. 加平衡离心管后在水平转子冷冻超速离心机上 4℃ 43000 g 离心 2 小时,重液 和轻液间的带为完整线粒体。
    18. 用广口吸管小心将线粒体转移到新的离心管中,加入等倍体积的预冷的溶液 C, 轻柔混匀。取少量在相差显微镜下检查线粒体完整性。
    19. 在水平转子离心机上 4℃ 19000 g 离心 20 分钟,小心将上清吸出后,线粒体沉 淀可以直接用于 DNA 提取。 四:线粒体 DNA 提取
    20. 将 600 uL 通用线粒体 DNAout 溶液 A 加入到上步得到的线粒体沉淀中并吹打 混匀,然后转移到 1.5 mL 离心管中。
    21. 65℃放置 5 分钟。
    22. 加入 300 uL 通用线粒体 DNAout 溶液 B,震荡混匀 10-30 秒。注意:溶液 B 非常粘稠,可以将其预热到 65℃并剪掉一截枪头后再取。 23. 加入 200 uL 自备的氯仿,震荡混匀 10-30 秒。 24. 12,000 g 室温离心 3 分钟。此时上清液将变得透明,中间层有白膜。 25. 小心转移上清液(约 0.8 mL)到一个新的 1.5 mL 离心管中,避免触及中间层 的白膜,可留少量上清不取。 26. 加入 1 倍体积的自备,颠倒 30 次混匀。 27. 12,000 g 室温离心 5 分钟,小心弃上清液。 28. 在离心管中加入 1 mL 自备的 75%乙醇,震荡 30 秒。 29. 12,000 g 室温离心 1 分钟,小心弃上清液。 30. 12,000 g 室温离心半分钟,残留液体将汇集在管底。 31. 用洗液枪吸弃管底残留液(约 50 uL)。 32. 加 50-100 uL 自备的 TE 缓冲液,溶解 DNA 沉淀即得线粒体 DNA 溶液。直接 取 5-10 uL 电泳检测,其余放直接使用或放-80℃冰箱备用。

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