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探针标记专用PCR Mix

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  • ¥100 - 2000
  • xuanya
  • 中国/美国
  • XY-TE-0719
  • 2025年11月06日
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    • 详细信息
    • 文献和实验
    • 技术资料
    • 保存条件

      常温运输和保存

    • 保质期

      两年

    • 英文名

      Instant PCR Kit

    • 库存

      950

    • 供应商

      上海烜雅生物科技有限公司

    探针标记专用PCR Mix产品及特点:
    本产品是在本公司即用型PCR试剂盒2.0的基础上改良而来,内含TaqDNA聚合酶、dNTPs、MgCl2、反应缓冲液、PCR增强剂、上样染料等所有PCR所需要的成分,用户只需加入模板和引物即可进行PCR反应,具有广泛的用途。
    1.扩增效率和灵敏度更高。
    2.方便,用户只需准备模板和引物既可以进行PCR实验。
    3.快捷,操作步骤已经最大限度地简化,能减少污染,降低实验误差。
    4.本产品A型含电泳染料,PCR反应液可直接上样电泳,进一步简化了操作。
    5.产物可直接用于T载体克隆,不需要额外的加A反应。
    6.染料单独提供,方便客户组合。
    产品细节图片1
    探针标记专用PCR Mix注:本产品分A和B两种
    A型产品:PCRMagicMix3.0中直接加入了专用染料,PCR后可以直接电泳;
    B型产品:PCRMagicMix3.0中没有加入专用染料,客户自己提供染料。

    探针标记专用PCR Mix运输及保存:
    低温运输,-20℃保存,有效期一年。
    自备试剂:DNA模板、引物、超纯水。

    探针标记专用PCR Mix使用方法
    以30uL的标准PCR反应体系为例:在一干净的PCR管中,加入下列成分:
    PCRMagicMix3.0                     15uL
    DNA模板(自备)
    哺乳动物基因组DNA                 0.5-1ug
    酵母基因组DNA                        5-500ng
    细菌基因组DNA                        0.5-50ng
    质粒DNA                                  5-500pg
    PCR回收片段                            1-100pg
    PCR引物(自备)                          10pmol each
    补水到                                      30uL
    放入PCR仪中进行PCR,结束后取5-10uL直接上样电泳(A型产品不需要额外再加DNA上样液),红色染料电泳速度相当于50bpDNA片段。

    探针标记专用PCR Mix注意:
    1.如果反应体系不是30uL,各成分需要等按比例增加或减少。
    2.如果DNA模板中有PCR不明抑制物(植物、土壤和血液等DNA样品常含此类抑制物),可以在PCR体系中加入1/10的PCR抑制物清除剂(30uL体系中加3uL),可能会对PCR有帮助。

    探针标记专用PCR Mix相关资料
    PCR反应的影响因素
    变性温度与时间:模板变性温度是决定PCR反应中双链DNA解链的温度,达不到变性温度就不会产生单链DNA模板,PCR也就不会启动。变性温度低则变性不完全,DNA双链会很快复性,因而减少产量。变性温度太高,又会影响酶的活性。一般情况下可设为94℃20~30秒,高温时间应尽量缩短,以保持耐热DNA聚合酶的活力,最高变性温度不宜超过95℃。

    探针标记专用PCR Mix退火温度与时间:
    退火温度决定PCR特异性与产量。温度高特异性强,但过高则引物不能与模板牢固结合,DNA扩增效率下降;温度低产量高,但过低可造成引物与模板错配,非特异性产物增加。合适的退火温度一般在45~68℃之间。设置特定反应的最适退火温度,可根据引物的(G+C)%含量进行推测,一般实验中退火温度比扩增引物的熔解温度Tm低5℃,退火时间一般为30~60秒,足以使引物与模板之间完全结合,长时间退火没有必要。

    探针标记专用PCR Mix延伸温度与时间:
    PCR反应的延伸温度一般选择在70~75℃之间,延伸时间根据所用聚合酶扩增速度和扩增片段大小设定,如同样扩增2Kb片段,若使用Taq酶只需1分钟,使用Pfu酶则应设定2分钟以上。延伸时间过长会导致非特异性扩增带的出现,时间太短则可能得不到扩增产物或得到一些短的非特异性片段。

    探针标记专用PCR Mix循环次数:
    可根据模板DNA的量、扩增片段的大小和扩增产物的下步应用等因素,设定20-40个循环。循环次数太少,扩增量不足,如果循环次数太多,错配几率会增加,非特异性背景严重。所以,在保证产物得率的前提下,应尽量减少循环次数。

    探针标记专用PCR Mix酶量:
    50μL反应体系可用0.5-5U酶,酶量的选择与模板DNA的量,扩增片段大小等有关,酶量过多易发生非特异性反应,而且可能增加突变的机率,尤其在进行高保真扩增时,应尽量减少酶量,但酶量过少时反应性能下降。

    探针标记专用PCR Mix模板:
    模板可以是单链DNA,也可以是双链DNA,质粒DNA的扩增效率略低于线状DNA。模板加量一般不需太多,不超过1μg为宜,因为加量过多可能导致非特异性扩增增加,但是要考虑模板中靶序列的含量。例如,使用基因组为模板扩增单拷贝或低拷贝靶序列,就需要适当加大模板用量。

    探针标记专用PCR Mix引物:
    引物与模板配对的长度应至少为17个核苷酸,最高不宜超过30个核苷酸,最佳长度为20~24个核苷酸,如需插入酶切位点,应在酶切位点5’端多加几个碱基,有利于酶切。引物的(G+C)%含量组成应均匀,尽量避免含有相同的碱基多聚体。两个引物中(G+C)%含量应尽量相似。引物内部应避免形成明显的次级结构,如发夹结构。两个引物之间不应发生互补,特别是在引物3’端。如果可能,引物3’端最好富有GC,这样退火后有利于引物3’端的延伸。人工合成的引物最好经过色谱层析纯化或PAGE纯化,以除去未能合成至全长的短链等杂质。引物的终浓度一般为0.1-2μM左右,浓度太高会导致非特异性扩增,太低则扩增产物太少。

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