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HepG2细胞,HepG2细胞系,HepG2人肝癌细胞

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  • ¥1500
  • ATCC、DSMZ、ECACC、RIKEN
  • 江苏
  • CL1353
  • 2026年03月21日
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    • 技术资料
    • 英文名

      HepG2

    • 库存

      100万

    • 供应商

      欣润生物

    • 肿瘤类型

    • 细胞类型

      细胞系

    • ATCC Number

      CL1353

    • 品系

    • 组织来源

      肝癌

    • 相关疾病

      肝癌

    • 物种来源

      人源

    • 免疫类型

      不详

    • 细胞形态

      上皮型

    • 是否是肿瘤细胞

    • 器官来源

      肝脏

    • 运输方式

      新鲜或干冰

    • 年限

      成年

    • 生长状态

      贴壁生长

    • 规格

      T25方瓶

    一、细胞特性
    1. 细胞名称:HepG2细胞(人肝癌细胞)
    2. 形态:上皮型,贴壁生长
    3. 含量:>1x106 /
    4. 污染:支原体、细菌、酵母和真菌检测为阴性
    5. 规格:T25瓶或者1mL冻存管包装


    二、细胞接收后的处理:
    1、贴壁细胞

    1. 收到T25方瓶细胞后,请检查是否漏液,如果漏液,请拍照片发给我们(冻存管细胞收到后直接37℃水浴复苏或直接放置于液氮中长期储存)。
    2. 请先在显微镜下确认细胞生长状态,去掉封口膜并将T25瓶置于37℃培养约2-3h
    3. 弃去T25瓶中的培养基,换用新鲜的完全培养基。
    4. 如果细胞长满(90%以上)请及时进行细胞传代。
    5. 接到细胞次日,请检查细胞是否污染,若发现污染或疑似污染,请及时与我们取得联系。

    2、悬浮细胞

    1. 收到细胞后,请检查是否漏液,如果漏液,请拍照片发给我们。
    2. 请先在显微镜下确认细胞生长状态,去掉封口膜并将15ml离心管置于37℃培养约2-3h
    3. 1200rpm离心5min,弃去15ml离心管中的培养基,细胞沉淀用新鲜的完全培养基重悬并培养。
    4. 如果细胞长满(90%以上)请及时进行细胞传代。
    5. 接到细胞次日,请检查细胞是否污染,若发现污染或疑似污染,请及时与我们取得联系。

                          
    本公司的细胞培养操作规程,供参考
    一、培养基及培养冻存条件准备:

    1. 准备MEM培养基,90%;优质胎牛血清,10%
    2. 培养条件: 气相:空气,95%;二氧化碳,5% 温度:37℃,培养箱湿度为70%-80%
    3. 冻存液:90%血清,10%DMSO,现用现配。液氮储存。
    二、细胞处理:
    1)复苏细胞:将含有1mL细胞悬液的冻存管迅速放入37℃水浴中(水面要低于冻存管盖部)摇晃解冻,移入事先准备好的含有4mL培养基的15ml离心管中混合均匀。在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,加入1mL培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液移入含有5ml培养基的培养瓶中培养过夜。第二天换液并检查细胞密度。
    2)细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。

       对于贴壁细胞,传代可参考以下方法:

    1. 弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
    2. 2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中,置于37℃培养箱中消化2-3分钟,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加入3ml此细胞的培养基终止消化。
    3. 轻轻吹打后吸出,移入15ml离心管中,在1200RPM条件下离心5分钟,弃去上清液,加入1mL培养液后吹匀。
    4. 移入到事先准备好的含有5ml培养基的T-25培养瓶中或含有14ml培养基的T-75培养瓶中培养。

    3)细胞冻存:待细胞生长状态良好时,可进行细胞冻存。贴壁细胞冻存时,先要消化处理并进行细胞计数。消化方法按照细胞传代方法的1-3步骤进行,最后的重悬液使用血清。悬浮细胞直接计数后离心,用血清重悬浮,加DMSO至最终浓度为10%。加入DMSO后迅速混匀,按每1ml的数量分配到冻存管中。本公司按每个冻存管细胞数目大于1X106个细胞冻存。

    注意事项:
    1. 收到冻存管细胞后,若发现干冰已挥发干净、冻存管瓶盖脱落、破损及细胞有污染,请立即与我们联系。
    2. 所有动物细胞均视为有潜在的生物危害性,必须在二级生物安全台内操作,并请注意防护,所有废液及接触过此细胞的器皿需要灭菌后方能丢弃。
    3. 细胞用途:仅供科研使用。

    发货方式:
    复苏后发货:我们复苏细胞后发货,货期一周左右,免运费。(气温较好建议复苏后发货)
    冻存发货(干冰运输):需额外增加干冰运费,选择干冰运输的我们发两管细胞,为了保证客户接种可靠性多发一管。(气温低于0℃须冻存发货)
    细胞发货采取专业的运输包装,并选择最快捷的运输方式(顺丰速运或其他空运快递)

    Preliminary screening of some traditional Zulu medicinal plants for antineoplastic activities versus the HepG2 cell line

    Aqueous and methanol extracts of nine traditional Zulu medicinal plants, Cissus quandrangularis L., Cyphostemma flaviflorum (Sprague) Descoings, Cyphostemma lanigerum (Harv.) Descoings ex Wild & Drum, Cyphostemma natalitium (Szyszyl.) J. v. d. Merwe, Cyphostemma sp., Rhoicissus digitata (L. F.) Gilg & Brandt, Rhoicissus rhomboidea (E. Mey. Ex harv.) Planch, Rhoicissus tomentosa (Lam.) Wild & Drum, R. tridentata (L. F.) Wild & Drum and Rhoicissus tridentata (L. F.) Wild & Drum subsp. cuneifolia (Eckl. & Zeyh.) N. R. Urton, all belonging to the Vitaceae family, were evaluated to determine their therapeutic potentials as antineoplastic agents. The antiproliferative activity in vitro against HepG2 cells was determined. Twenty-two of the twenty-seven crude plant extracts showed activities ranging from 25% to 97% inhibition of proliferation when compared with the control which showed no inhibitory activity. Higher degrees of growth inhibition were found in aqueous root extracts in comparison with the methanol extracts of the same plant parts. The results show potential。

    In Vitro Assessment of the Ethanol-Induced Hepatotoxicity on HepG2 Cell Line - ScienceDirect

    This study reports on measurement of the ethanol-induced hepatotoxicity in vitro on using the human hepatocyte cell line HepG2. Cells were incubated in the presence of increasing ethanol concentrations (10-80 mM). Cytotoxicity was quantitated spectrophotometrically both by the metabolism of the tetrazolium dye MTT and by the release into the medium of LDH and other marker enzymes of ethanol damage (AST, GGT and GHD). No cytotoxicity was observed up to 40 mM ethanol whereas a dose-dependent increment was found at higher concentrations (60-80 mM ethanol). At 80 mM ethanol, cell viability after 24 hours was reduced to 68% and 60% as assessed by MTF and LDH release respectively (p <0.0001 vs. controls). Exposure for additional 24 hours did not increase cytotoxicity. Transmission electron microscopy revealed the presence of fat droplets (steatosis) and mitochondrial damage. The method reported appears to be an useful and reproducible technique for the in vitro assessment of the ethanol-induced cytotoxicity in a human liver cell line.

     

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    图标文献和实验
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    Chicken intestinal epithelial cells were obtained from NEWGAINBIO company. Cells were cultured on 37℃, with 5% CO2, in the Ham’s F-12 Nutrient (DMEM/12) that contained the following supplementations: fetal bovine serum (5%), in-sulin (5 µg/mL), transferrin (5 µg/mL), selenium (5 ng/mL), epidermal growth factor (5 ng/mL) and penicillin-streptomycin (100–100 U/mL) for cell culturing (full DMEM/12). Experiments were performed with chicken intestinal epithelial cells and working solutions were prepared with plain DMEM/12 without supplementation. For the investigations, cells were seeded onto 96-well, 24-well or 6-well polystyrene cell culture plates.

     

    Primary hVICs (passage 2) were cultured to 50–60% confluence and infected with pGMLV-SV40T-puro lentivirus (NewgainBio, Wuxi, China) at a multiplicity of infection of 80 supplemented with 5 µg/mL polybrene (Sigma-Aldrich, Buchs, Switzerland).

     

    Tissue was cultured until cells became visible around the tissue, and when the fusion reached 90% (FIGURE 1A) §ask ¦lled with the prepared culturing medium was sent to the company for further immortalisation. Cell immortalisation was done for cell stability and longer-term use. Immortalised cells were cultured with 10% FBS and 1% PS in the DMEM medium.  After the cells multiplied and merged, they were routinely passed and grown ( NEWGAINBIO Inc. Wuxi, Jiangsu, China) (FIGURE 1B-C).

     

    Mouse primary cultured renal vascular ECs and VSMCs were obtained from Newgainbio company, which were tested by Factor VIII and α-smooth muscle actin (α-SMA), the marker of ECs and VSMCs. RNeasy Mini Kit was used for RNA extraction, and the above protocols were repeated.

     

    Porcine primary colon epithelial cells (Newgainbio company, Wuxi,China) were cultured in Dulbecco's Modified Eagle's Medium (Solarbio, Beijing, China) containing 10 % fetal bovine serum (BioInd, Kiryat shmona, Lsrael) at 37 ◦C and 5 % CO2 humidity.

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