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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
86
- 英文名:
Fluorescent PCR detection kit for Bacillus cereus
- 保质期:
-18℃以下,有效期6个月
- 供应商:
上海康朗生物科技有限公司
- 保存条件:
-18℃以下,有效期6个月
- 规格:
48次/盒
一、简介:
本试剂盒用一对蜡样芽胞杆菌特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光PCR技术对蜡样芽胞杆菌的核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
二、蜡样芽孢杆菌单重荧光PCR检测试剂盒用途:
本试剂盒适用于检测水样粪便、疑似污染的水、食物等样本中的蜡样芽胞杆菌(BC),用于蜡样芽胞杆菌(BC)感染的辅助诊断,其检测结果仅供参考。
三、试剂盒组成:(48T)
组份 数量 规格
BC反应液(BC-qPCR MIX) 1管 672μL/管
核酸提取液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
BC阳性对照(BC-PTC) 1管 50μL/管
四、蜡样芽孢杆菌单重荧光PCR检测试剂盒储存条件及有效期:
本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为12个月。
五、荧光PCR仪器适用范围:
ABI系列,Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。
六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
水样便取0.5-1mL;疑似污染的食物取1g。
6.2 样品前处理
水样便13000 rpm离心 2min,去尽上清;疑似污染的食物用手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100µL于1.5mL灭菌离心管中;疑似污染的水直接取100µL。
6.3 DNA提取
可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
对上述处理好的样本加入等体积核酸提取液(固体标本加入50μL核酸提取液),100℃恒温处理10min,13000rpm离心5min,取上清液转移至新的1.5mL EP管,-20℃保存;
注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。
七、蜡样芽孢杆菌单重荧光PCR检测试剂盒检测步骤
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(BC-qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合物 1 µL N×1 µL
总量 15 µL N×15µL
(1) 计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液,向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(BC-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM。淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。
八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
(1) 阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
(2) 阳性对照(BC-PTC):均产生扩增曲线。
(3) 以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(2) 在试验成立的条件下,Ct值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线,表明BC核酸阳性。
(3) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明BC核酸阴性。
(4) 如果Ct值>35,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
(5) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行BC 检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明BC核酸阳性;否则判为样本阴性。
九、注意事项:
(1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2) 所有使用的离心管最好高压灭菌,而且必须不含DNA酶。
(3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
(4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
(5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
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