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大提柱式植物 DNAout4次说明书

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  • 上海抚生
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  • 2025年07月15日
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    • 英文名

      4次

    • 保质期

      详见说明书

    • 供应商

      上海抚生

    • 保存条件

      低温冷藏

    • 规格

      4次

    大提柱式植物 DNAout4次说明书操作流程:
    1. 根据要保存的各样本的体积,计算出所需RNAwait用量。RNAwait的用量应当是组织体积的10倍(如100mg组织约用1ml RNAwait);离心收集2×106细胞RNAwait的用量是1ml。
    2. 将RNAwait按需要量分装入自备保存管中;
    3. 快速将较大的组织切成厚度<0.5 cm的任意片状,立即完全浸入RNAwait中。组织的厚度一定要<0.5 cm。组织过厚则RNAwait不能有效渗入,组织中间部位的RNA不能受到保护。较小的组织(如大鼠的肾脏、脾脏,小鼠的大部分器官)取下后可以直接浸入RNAwait。
    4. 保存时先将样本浸入RNAwait后置4℃冰箱过夜(4℃过夜是必需的,这样可使RNAwait完全渗入到组织中),然后转移到-20℃冰箱(RNAwait在-20℃时仍为液态,有结晶析出,是正常情况);或者在4℃冰箱过夜后,从RNAwait中取出组织块,转移到-80℃冰箱。在RNAwait中保存的标本,反复冻融至室温20次不影响RNA的质量。
    大提柱式植物 DNAout4次说明书注意事项:
    1. 组织和细胞取材速度要快,在获取后应当尽快浸入RNAwait,以防止RNA降解。
    2. 冰冻组织不能用RNAwait保存,因为RNAwait不能有效渗入冰冻组织。
    3. 保存样品的RNA提取:样本从-20℃或-80℃冰箱取出后,复苏到室温后,取出组织块,再用于提取RNA。细胞样本则复温后低速离心收集细胞,去除RNAwait,再用于提取RNA。后继的处理(如组织匀浆)可以在室温下进行,不必在液氮中操作,RNA仍能有效得到保护。残留少量RNAwait保存液不影响后继提取RNA的质量。
    大提柱式植物 DNAout4次说明书实验要点:
    1.CTAB 溶液在低于15℃时会析出沉淀,因此在将其加入冷冻的植物材料中之前必须预热。  
    2.在最适条件下,DNA—CTAB 沉淀呈白色纤维状,很容易一下子就从溶液中钩出。不过,某些植物种的DNA 沉淀中可能含有杂质,特别是多糖,使DNA 沉淀呈絮状或胶状,这种情况下可能需要稍事离心才能得到DNA. —CTAB 沉淀。 
    3.饱和酚虽然可有效地使蛋白质变性,但酚不能完全抑制RNA 酶的活性,而且酚可以溶解含poLy(A)的mRNA。如果用的混合液,可减轻这两种现象,同时可加入适量的作用是消泡,并使蛋白质层紧密,使水相和有机相分层较好。 细菌的培养和收集 将含有质粒pBS 的DH5α菌种接种在LB 固体培养基(含50μg/ml Amp)中, 37℃培养12-24 小时。用无菌牙签挑取单菌落接种到5ml LB 液体培养基(含50μg/ml Amp)中,37℃振荡培养约12 小时至对数生长后期。小量提取法对于从大量转化子中制备少量部分纯化的质粒DNA 十分有用。这些方法共同特点是简便、快速,能同时处理大量试样,所得DNA 有一定纯度,可满足限制酶切割、电泳分析的需要。
    大提柱式植物 DNAout4次说明书详细介绍:
    产品细节图片1

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    pCMV-HA-NPhosphate Buffer,0.5M, pH7.0  2 ug
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    pCMV-SPORT6 GTF3C3Phosphate Buffered RIPA with Glycerol,2X2 ug
    pCMV-SPORT6 HSP90B1Phosphate Buffered RIPA,2X2 ug
    pCMV-SPORT6 HSPA1BPhosphate Buffered Saline (PBS),10X, pH7.4 2 ug
    pCMV-SPORT6 KIAA0372Phosphate Buffered Saline (PBS),1X 2 ug
    大提柱式植物 DNAout4次说明书十一酸睾酮(标准品) 质量规格:>99%,BR 2-Hydroxyacetophenone

    十一酸(标准品) 质量规格:>98%,BR 2-Isopropylimidazole
    十一酸(Standard for GC,≥99.0%(GC)) 质量规格:>98%,植物激素级 2-NAA, 2-Naphthaleneacetic acid
    十溴二醚 质量规格:>98%,BR 2-Naphthaldehyde
    十五烷酸(分析标准品,≥99.5%(GC)) 质量规格:>98%,BR 2-Naphthyl acetate
    十五氟辛酸,高等级[离子对色谱级] 质量规格:>98%,BR 3,4,5-Trimethoxycinnamic acid
    十五氟辛酸(约5mmol)[离子对色谱级] 质量规格:>99%,BR 3,4-Dimethoxybenzaldehyde
    十烷基三基化铵 质量规格:>98%,BR 3-Hydroxybenzaldehyde
    十四烷(标准品) 质量规格:>98%,BR 3-Hydroxycinnamic acid
    十四烷(Standard for GC,>99%(GC)) 质量规格:>98%,BR 4,4-Dihydroxydiphenyl sulfone 
     

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    • 如何做好 WB 方案设计?你需要了解这些信息

      在 RIPA 不可溶组分中,如果样品又是研磨困难的组织样品,则优先选择对膜蛋白和小分子量蛋白提取效率更高且不需要匀浆仪的 Invent 柱式法工具进行总蛋白提取[1]。 * 目标蛋白在某个特定细胞器上(内质网,高尔基体,溶酶体,线粒体,内体等)表达,且蛋白表达量较低,若用总蛋白检测时条带较弱,则推荐使用 Invent 柱式法工具富集特定细胞器蛋白后再检测,提高检出效率。 * 研究蛋白定位或研究蛋白转运过程,推荐使用 Invent 柱式法工具进行细胞组分分离,将样品分离为不同组分如分成细胞核,细胞浆,细胞

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      等。 PCR 产物 两种方式:一种纯化后直接酶切连接;一种连 T 载体再往下切连接。我个人强烈建议第二种,连 T 载体。因为 PCR 产物直接酶切我觉得有两个缺点:①由于两头把手太短,虽说有保护碱基,但我觉得还是不如从质粒上往下切好切,而且容易切坏、切碎;②无法从电泳上看出来切没切开,因为也就切下了几个十几个 bp,带形没啥变化。连 T 载体的优点:①进载体后,大提一次的质粒夸张点说够用一辈子的,再说 PCR 那东西还不太稳定,一把多一把少的。②酶切会很清晰,切下来了就是有带,没切动

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