细胞核微量制备试剂盒

细胞核微量制备试剂盒

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  • 百奥莱博
  • 北京
  • 2025年07月14日
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      271

    • 英文名

      Nuclei Miniprep Kit

    • 保质期

      一年

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      常温

    • 规格

      50次

    特别提示:包括细胞核微量制备试剂盒在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!


    产品名称:细胞核微量制备试剂盒
    英文名称:Nuclei Miniprep Kit
    产品货号:BTN100601
    产品规格:50次

    用高密度介质来分离动物软体组织(如肝脏、脾脏等)细胞核是目前主流的方法,它是由Chauveau于1956年发明,其原理是细胞核的密度较大,在高速离心条件下(40000g 1小时)可在高密度介质(2.2mol/l 蔗糖溶液)中沉降下来,从而达到与细胞质其它成分分开的目的。该方法能通过一步离心得到较高纯度的细胞核,得到广泛应用。本产品就是在Chauveau方法的基础上优化改进而来。

    产品特点:
    1.基于密度梯度分离,可有效去除细胞质及其他细胞器,得到的细胞核纯净。
    2.加进氯化钙、氯化镁、氯化*等改变分离介质渗透压的物质,减少了细胞核的脆性,增加了细胞核的完整性。
    3.精心调节了介质的pH,防止细胞核在分离过程中的聚集,还能保持细胞核的精细结构。
    4.快速,整个操作过程仅需1小时即可完成(对一个样品而言)。
    5.提供染色试剂,可以在普通光学显微镜下检测纯化的细胞核的纯度。
    6.处理温和,得到的细胞核中的大部分蛋白质都具有活性,可以用于胶迟阻实验、酶活性分析细胞凋亡、信号传递、代谢和蛋白组学等的研究;也可用于超大片段DNA的纯化。
    7.不但适用于动物和植物培养细胞,还能用于实体组织(能用Dounce或Potter 匀浆器匀浆的组织均可)。
    8.一次微量提取足够处理0.1 克组织或10E7个培养细胞,本产品足够50次微量提取。

    试剂盒组成:
    成分 规格
    溶液A成分一 100ml
    溶液A成分二(干粉) 约20g
    溶液B成分一 50ml
    溶液B成分二(干粉) 约100g
    细胞核染色液 1套
    说明书 1份


    储存条件:常温运输和保存,有效期一年。

    使用方法:

    一、准备工作:先将溶液A的成分二(干粉)全部加入到溶液A成分一(溶液)中,摇晃溶解后得到100mL溶液A。将溶液B的成分二(干粉)全部加入到溶液B成分一(溶液)中,摇晃溶解后得到50mL溶液B。4℃放置不能超过2 天,长期放置需要放-20℃。

    二、微量细胞核分离(放量提取各试剂的用量可以按比例放大):
    1.对组织细胞:称取100~200mg 新鲜组织(如动物肝脏、脑、心肌和植物叶片等),用自备的PBS或生理盐水洗净血水,滤纸吸干,用剪刀或刀片将其剪为碎块(zuì好大小为1cm3,过小反而不利于匀浆)放入小容量Dounce或Potter 玻璃匀浆器内。
    2.对培养细胞:用自备胰酶按标准方法消化培养细胞,PBS 洗涤,800×g 5~10分钟离心收集细胞,计数。每次微量提取需要5×10E7个细胞,加入1.0mL预冷的溶液A重悬细胞,然后转移到小容量Dounce或Potter 玻璃匀浆器内
    3.用Dounce或Potter 组织匀浆器在冰上破碎组织或细胞。如果用手动匀浆器,一般需要20~30次。如果用电动匀浆器,一般需要处理3-5次,每次5~10秒钟(转速为500r/min)。
    4.将匀浆液转移到离心管中。如果匀浆液有可见的结缔组织和未破碎的组织块,可以用三层自备的纱布放在1.5mL离心管管口,将匀浆液过滤进入离心管。可取少量滤液涂在载玻片上制得涂片A,自然干燥涂片以便染色做显微镜观察。
    5.4℃,700-800×g 水平离心5-10分钟。细胞核沉淀在收集管底部,弃上清。可取少量上清液涂在载玻片上制得涂片B,自然干燥涂片以便染色做显微镜观察。
    6.加入0.5mL预冷溶液A重悬沉淀。用预冷的匀浆器(用前需要将表面的组织洗去)重悬沉淀。可取少量上清液涂在载玻片上制得涂片C,自然干燥涂片以便染色做显微镜观察。
    7.在水平型离心管中加入0.5mL预冷的溶液B,然后靠管壁慢慢加入上步得到的重悬液。
    8.在4℃ 23000g离心30分钟,管底的沉淀即为细胞核。
    9.小心吸弃上清液。注意:上清一般比较粘稠,zuì好倒立一段时间。
    10.用0.5mL溶液A重悬沉淀。
    11.在4℃ 1500g离心5分钟,吸弃上清,沉淀即为纯净的细胞核。可以直接使用,也可以加等体积的自备甘油,混匀后放液氮或-70℃保存。可取少量上悬浮液涂在载玻片上制得涂片D,自然干燥涂片以便染色做显微镜观察。
    12.用本方法一般可以从0.1g 肝脏组织中纯化到1-2×107个细胞核。如果后续试验是Western Blot和2D-胶电泳,可直接加入上样缓冲液裂解细胞核后上样。

    三、显微镜检测涂片,计算效率
    1.将干燥后的A-D 四张涂片加入固定液固定15分钟,晾干。
    2.Giemsa 染液染10分钟。
    3.自备蒸馏水漂洗数秒,用滤纸吸干水。
    4.用显微镜(40×)检查涂片,细胞核将呈紫红色,混杂的细胞质为浅蓝色碎片。根据每步细胞核的数量可以粗略估计回收效率。

    疑难解答:
    本说明书强烈建议用离心力g 而不是转速计算所需的离心速度,因为不同的离心机转子直径不同,即使是同一转速,其离心力也不同。如果只知道转速,可用下式计算离心力。
    G=1.11×(10-5)×R×[rpm]2
    G为离心力,一般以g(重力加速度)的倍数来表示;[rpm]2即转速的平方;
    R为离心机转子的半径(单位为厘米)。

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