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- 2026年01月13日
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实验室
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2周内
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耗材类，无质保
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友诚生物
Instech拥有逾20年设计和生产实验动物采血给药导管的经验。他们将这些知识转化为可靠的设计，高品质的制造和强大的技术支持。SoloCath™动物采血给药导管的重要特征是圆形末端。数据表明，圆形末端对血管内膜的创伤比衬比方形或斜劈导管小，并且能使血流更通畅。
对于需要持续对动物给予**并监测某些生理参数的研究应用来说，清醒无束缚动物采血给药系统无疑是*好的解决方案。传统的方法——每隔特定时间进行一次注射或采样，会对实验动物的生理状况造成巨大的影响，动物由此产生的应激也是不可预估的，这些不可控因素都会造成实验数据的严重失真。
而清醒无束缚动物采血给药系统 则上乘解决了此类问题。清醒状态的动物，所测的生理参数是**手的，优良真实的数据。采用连续的精密的注射泵来实现**的注射（例如7×24小时连续注射），采用专业的连续取样装置和实时/延时分析仪器，来实现连续的样品收集和分析处理（例如微透析）。
SoloCath™导管可用硅胶，聚氨酯或肝素涂层聚氨酯，有适合任何大小鼠的尺寸。
Jugular Vein Catheters for Rats
Femoral Vein Catheters for Rats
Femoral Artery Catheters for Rats
| Model | Name | |
| C10PU-RFA1310 | Catheter for rat femoral artery, 1 to 3Fr, 30cm, collar @1.2cm. Fits 22ga. |
Carotid Artery Catheter for Rats
Bile Duct Catheters for Rats
Intrathecal Catheter for Rats (32ga Polyurethane)
| Model | Name | |
| C08PU-RIT1301 | Rat intrathecal catheter, 32ga (0.8Fr) PU 18cm, stylet, luer. Fits 27-25ga. (ReCathCo 0046EO) |
Jugular Vein Catheters for Mice
Femoral Vein/Artery Catheters for Mice
Carotid Artery Catheters for Mice
| Model | Name | |
| C10PU-MCA1301 | Catheter for mouse carotid artery, 1 to 3Fr, 8cm, collar @ 1.1cm. Fits 22ga. |
Tail Vein Cannula for Mice
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文献和实验在动物实验过程中，应根据不同的实验目的、动物种类、药物类型来决定动物的给药途径与方法。动物的给药方法主要分为注射法和投入法两种，不同方法按给药途径又分为很多具体类型。注射法分为：皮下注射、肌肉注射、腹腔注射、脑膜下注射、脑内注射、胸腔内注射、腰椎内注射、静脉注射、关节腔注射和心内注射。投入法可分为：鼻腔内投入、胃腔内投入、肠管内投入、气管内投入和经口腔投入。以下将各种动物的主要给药途径和方法做一介绍。（一）皮下注射注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下
心包膜，将心脏推出体外，暴露左冠状动脉前降支，用6-0无菌丝线快速结扎，打活结，看到心脏底部变白，用荷包缝法迅速关闭胸腔，挤压防止气胸，造成左室前壁心肌缺血。分别记录术前、缺血时心电图变化。 到达缺血时间以后，解开活结，再次关闭胸腔，缝合肌肉皮肤，进行心肺复苏。分别记录术前、缺血时和再灌注后的心电图变化。造模成功后进行药物治疗，术后观察动物活动、采食情况。处死前对实验动物采血。术后进行心肌组织取样、TTC-Evans blue染色，进行心梗面积计算。 4、实验操作及检测
一、研究背景在脑科学基础研究领域中，脑内给药已经成为大多数动物实验的重要环节，比如注射病毒、细胞、蛋白分子、药物、标记染料探针等，根据实验设计，常见有两种给药方式：单次注射给药和多次反复给药（慢性给药），前者通常采用微量注射器，后者采用套管（如下图，右）来实现。无论哪一种方式，均具有操作简单、动物微创（或无创）、注射精准等优点。二、套管微量给药系统本文主要介绍多次反复给药方式—套管。功能用途：用于小鼠、大鼠、猴等实验动物目标脑区的反复多次给药，也可以结合配套光纤使用（光遗传），在给药
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