北京土拉弗朗西斯菌荧光PCR检测试剂盒厂家

特别声明：本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品，严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

北京百奥莱博生产销*(代"售")的北京土拉弗朗西斯菌荧光PCR检测试剂盒厂家，是高品质的细菌PCR检测试剂盒产品，欢迎的您垂询订购。

名称：北京土拉弗朗西斯菌荧光PCR检测试剂盒厂家
编号：SYA132
产地：国产|进口
等级：科研试剂
规格：48次/盒
品牌：百奥莱博

欲了解更多北京土拉弗朗西斯菌荧光PCR检测试剂盒厂家的品牌、产地、价格及说明书等产品信息，请致电北京百奥莱博科技有限公司，我们将竭诚为您服务，另外，以下产品正在火爆促销:

·禽流感病毒(AIV)通用单重凝胶PCR检测试剂盒
编号：SYA534
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·诺如病毒G2型单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA202
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·卵形疟原虫单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA126
等级：科研实验专用
规格：48次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对卵形疟原虫特异性引物，结合一条特异性荧光探针，用荧光PCR探针技术进行卵形疟原虫的检测。

二、用途：
本试剂盒可用于卵形疟原虫检测鉴定及突发公共卫生事件的处置，还可用于卵形疟原虫的环境监测、卫生检疫及感染的辅助诊断，其检测结果仅供临床参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
卵形疟原虫荧光PCR反应液(qPCR MIX) 1管 672μL/管
DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
酶混合物(DNA Polymerase MIX) 1管 48μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
卵形疟原虫阳性对照(PTC) 1管 50μL/管

四、荧光PCR 仪器适用范围
ABI 系列，Bio-Rad 系列，Roche 系列等荧光定量PCR 检测仪等。

五、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃保存，避免反复冻融，有效期为6 个月。

六、实验操作步骤
6.1 标本采集
血液： 用一次性无菌5ml 注射器抽取疑似人或动物血3-5ml，置于枸橼酸*或EDTA2Na 抗凝管中，摇匀送检。
肺脏等组织：取上述组织1g左右，置于1.5ml洁净EP管中送检。
乳液、体液等标本：取相应标本3-5ml，转至1.5ml洁净EP管中送检。
6.2 DNA提取
可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液，按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
血液样本：直接取200μl 抗凝血，转至一洁净的1.5ml 离心管中，加入1ml 双蒸水，剧烈震荡30s，8000rpm 离心5min，弃上清，至无明显红色沉淀。(若沉淀明显，请再重复上述步骤一次)。加入1ml生理盐水，剧烈震荡15s，13000rpm 离心5min，弃上清。沉淀加入50μl 核酸提取液(使用前请室温溶解并充分混匀)并与沉淀混匀，100℃恒温10min，13000rpm 离心3min，取上清4μl 进行PCR 反应。
肺、淋巴结等固体组织：剪取约0.1g 组织，用生理盐水洗去血污，剪碎加入0.5mL TE 转移到匀浆器中匀浆。将匀浆液50μl 转移到1.5mL 离心管中，加入50μl 核酸提取液(使用前请室温溶解并充分混匀)并与沉淀混匀，100℃恒温10min，13000rpm 离心3min，取上清4μl 进行PCR 反应。
乳液等液体标本：取标本2-3mL，13000rpm 离心3min，弃上清，沉淀加入50μl 核酸提取液(使用前请室温溶解并充分混匀)并与沉淀混匀，100℃恒温10min，13000rpm 离心3min，取上清4μl进行PCR 反应。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5μL 加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 PCR 扩增
从试剂盒中取出荧光PCR 反应液(卵形疟原虫-qPCR MIX)、酶混合物(DNA Polymerase MIX)，室温融化并振荡混匀后，10000rpm 离心10s。
设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合液 1µL N×1µL
总量 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm 离心10s，向设定的N 个PCR 反应管中分别加入15μL，向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(PTC)5μL，10000rpm 瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
阳性对照(PTC)：均产生扩增曲线。
以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明卵形疟原虫核酸阳性。
Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明卵形疟原虫核酸阴性。
如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行卵形疟原虫real time PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明卵形疟原虫核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
(1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2)所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
(3)PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR 扩增区等)，防止实验室污染。
(4)样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
(5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



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·猪乙型脑炎抗体ELISA检测试剂盒
编号：SYA639
等级：科研实验专用
规格：192次/盒

·肠出血型大肠杆菌EHEC O157/H7双重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA104
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·鼠源性成分单重荧光PCR检测试剂盒(定量)
编号：SYA307
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·牛源性成分单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA290
等级：科研实验专用
规格：48次/盒
一、简介
本试剂盒用一对牛源性成分特异性引物，结合一条特异性荧光探针，用荧光PCR技术对牛源性成分DNA进行体外扩增检测。本试剂盒中牛源性成分的探针报告基团为FAM。

二、用途
该试剂盒适合于各种饲料及其它样品中牛源性成分的检测。

三、试剂盒组成(48T)
组成成分 数量 规格
牛物种荧光qPCR反应液(Bos-qPCR MIX) 1管 600μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
阳性对照(Bos-PTC) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围
ABI系列，Bio-Rad系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品采集与DNA提取
6.1 样品采集
样品的采集按照国家标准《饲料中牛羊源性成分的定性检测定性聚合酶链式反应(PCR)法》(GB/T 20190-2006)要求进行。
6.2 DNA提取
可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Bos-qPCR MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 15µL N×15µL
向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(Bos-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃ 延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM，淬灭基团：NONE，请勿选择ROX 参比荧光。

八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1） 阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
（2） 阳性对照(Bos-PTC)：均产生扩增曲线。
（3） 以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
（1） 在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明牛源性成分核酸阳性。
（2） Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明牛源性成分核酸阴性。
（3） 如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4） 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行牛源性成分qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明牛源性成分核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1） 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2） 所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3） PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4） 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5） 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。




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·羊源性成分单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA291
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·风疹病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA248
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·小肠耶尔森菌单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA024
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·禽传染性法氏囊病病毒(IBDV)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA352
等级：科研实验专用
规格：48次/盒|96次/盒

·口蹄疫O型(FMDV-O)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA480
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·登革热病毒Ⅳ型单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA228
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·勃氏考克氏体单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA134
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·牛传染性鼻气管炎病毒(IBRV)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA494
等级：科研实验专用
规格：48次/盒|96次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对牛传染性鼻气管炎病毒(IBRV)特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对牛传染性鼻气管炎病毒(IBRV)核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

二、原理
该试剂盒适用于检测气管分泌物试子、肺组织等样本中牛传染性鼻气管炎病毒(IBRV)，用于牛传染性鼻气管炎病毒(IBRV)感染的辅助诊断，其检测结果仅供临床参考。

三、试剂盒组成：(40T/Kit)
组份 数量 规格
IBRV反应液(IBRV-qPCR MIX) 1管 800μl/管
核酸提取液(DNA Extraction) 2管 1.5ml/管
酶混合物(Enzymes Mix) 1管 40μl/管
阴性对照(NTC) 1管 250μl/管
IBRV阳性对照(IBRV-PTC) 1管 50μl/管

四、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列、MJ系列、Roche系列，博日系列及其他荧光定量PCR检测仪。

五、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为12个月。

六、样本采集、前处理与DNA提取
6.1 样本采集
病死或扑杀动物，无菌采集肺病变部位或病变/非病变部位交界处的样品；活动物灭菌棉试子沾取气管分泌物，放入无菌试管中。
6.2 样本前处理：
组织样本：每份组织分别从3个不同的位置称取样本约1g，手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨，加入1.5ml生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至1.5ml灭菌离心管，8000rpm离心2min，取上清液100μl于1.5ml灭菌离心管。
6.3 DNA提取
6.3.1 对于上述处理好的样本加入等体积的核酸提取液(固体标本加入50μl核酸提取液)，100℃恒温处理10min，13000rpm离心5min，取上清液转移至新的1.5mlEP管，-20℃保存；
6.3.2 DNA的提取也可以采用商业化DNA提取试剂盒。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接去4μl加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的制备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(IBRV-qPCR MIN)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 20μl N×20μl
酶混合物 1μl N×1μl
总量 21μl N×21μl
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入21μl荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(IBRV-PTC)4μl，10000rpm瞬时离心10s。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件：
预变性 1循环 94℃ for 2 min
PCR扩增 40循环 94℃ for 15 sec
55℃ for 30 sec
在55℃延伸时收集荧光信号。报告基因：设置为FAM，淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判断
(1)阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
(2)阳性对照(IBRV-PTC)：均产生扩增曲线。
(3)以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3结果判定
(1)在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明IBRV核酸阳性。
(2)Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明IBRV核酸阴性。
(3)如果Ct值＞35，判为可以样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
(4)对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行IBRV qPCR检测。如果重复扩增曲线为为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明IBRV核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
(1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2)所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
(3)PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
(4)样本提取、试剂配制、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
(5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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