pBT2葡萄球菌表达质粒

CRISPR/Cas9 抗体最新发布

研究领域中，CRISPR 技术日渐成熟，当然每家公司所使用的具体 protocol 跟质粒载体不尽相同，做出来的稳定细胞株还是有点差异的，编者就不多赘述。还有少数公司比如汉尹公司，也可以利用 CRISPR/Cas9 技术去提高细胞内源基因的表达，效果可以与转染过表达质粒相媲美，避免了外源基因对细胞的影响，优势显而易见。作为一家成熟的抗体公司，我们也会利用 CRISPR/Cas9 去 knockout 做敲除验证，这对于抗体特异性的判断是用 siRNA 所不能比的。如果研究人员经常利用 CRISPR

在大肠杆菌中高效表达外源蛋白的策略

发表[1，2，3]。国内针对外源基因在原核细胞中高效表达的关键因素，构建了高效表达载体[4]，并在此基础上成功表达了一系列细胞因子的基因[5，6，7]。我们在分析了国内外有关在原核系统中表达蛋白的实验资料的基础上，对在大肠杆菌中高效表达外源蛋白的策略所涉及的内容进行全面的总结，以期有助于我国在这方面的研究。 1.有效表达载体的构型 构建表达质粒需要多种元件，需要仔细考虑它们的组合，以保证最高水平的蛋白质合成。E.coli 表达载体的基本结构[8]。 启动子(以杂和的tac 启动子为例

位点特异性核酸内切酶的蛋白质工程

来源的信息以鉴别 MutH 中的那些氨基酸残基，它们作为可能的候选者，用来感知 d (GATC) 位点的甲基化状态，即一条链上，甲基在腺嘌呤 N6 上存在，而在另一条链上则不存在这样的甲基。 已知在大肠杆菌、流感嗜血杆菌、霍乱弧菌、ShewaneWaoweWensis 和 CoZweZZzasp. 中都鉴定出了 MutH 蛋白；有可能在这些高度同源的蛋白质中，那些负责感知 d (GATC) 位甲基化状态的氨基酸残基是保守的。MutH 与限制性酶，如来自于金黄色葡萄球菌的 Sau3AI 存在