北京猪瘟兔化弱毒疫苗荧光PCR检测试剂盒(HCLV)现货

特别声明：本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品，严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

北京百奥莱博生产销*(代"售")的北京猪瘟兔化弱毒疫苗荧光PCR检测试剂盒(HCLV)现货，是高品质的动物疫病PCR检测试剂盒产品，欢迎的您垂询订购。

名称：北京猪瘟兔化弱毒疫苗荧光PCR检测试剂盒(HCLV)现货
品牌：百奥莱博
产地：国产|进口
等级：科研试剂
编号：SYA471

关于北京猪瘟兔化弱毒疫苗荧光PCR检测试剂盒(HCLV)现货的更详细说明，请致电我公司咨询，我们将以最饱满的热情为您提供解答，此外，我公司专业供应下列产品：

·博卡(Boca)/呼吸道合胞(RSV)/偏肺(MPV)病毒三重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA193
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·猪瘟病毒抗体ELISA检测试剂盒
编号：SYA629
等级：科研实验专用
规格：192次/盒

·流感病毒N2型单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA162
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·牛口蹄疫A型抗体ELISA检测试剂盒
编号：SYA658
等级：科研实验专用
规格：192次/盒|480次/盒

·羊种布鲁氏菌单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA116
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·驴源性成分单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA296
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·牛口蹄疫VP1结构蛋白抗体ELISA检测试剂盒
编号：SYA656
等级：科研实验专用
规格：192次/盒|480次/盒

·甲型流感病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA146
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·猪口蹄疫病毒亚I型抗体ELISA检测试剂盒
编号：SYA647
等级：科研实验专用
规格：192次/盒|480次/盒

·蜱传出脑炎病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA240
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·禽流感病毒H7亚型(AIV-H7)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA332
等级：科研实验专用
规格：48次/盒|96次/盒

·禽J亚型禽白血病病毒(ALV－J)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA364
等级：科研实验专用
规格：48次/盒|96次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对禽J亚型禽白血病病毒特异性引物，结合一条特异性探针，用一步法荧光RT-PCR技术对禽J亚型RNA进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。本试剂盒中禽J亚型禽白血病病毒的探针报告基团为FAM。

二、用途：
该试剂盒适合于检测的全血、带有白血细胞的血浆或血清、脾脏、肝脏、肾脏等样本中禽J亚型禽白血病病毒(ALV-J)的特异性检测。适用于禽J亚型禽白血病病毒感染的辅助诊断及流行病学调查，其检测结果仅供参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
禽J亚型禽白血病荧光qRT-PCR反应液(ALV-J-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
阳性对照(ALV-J-PTC) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与RNA提取
6.1 样品的采集
按照相关标准采集。标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-80℃，但不能超过6个月，标本运送应采用0℃冰壶。
6.1.1 血清：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入无菌的干燥玻璃管，室温(22-25℃)放置30-60min，血标本可自发完成凝集析出血清，或直接使用水平离心机，3000rpm离心5min，吸取上层血清，转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.2 血浆：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入含EDTA2Na(乙二*(代"胺")四乙酸二*)或柠檬酸*抗凝剂的玻璃管，立即轻轻颠倒玻璃管混合5-10次，使抗凝剂与静脉血充分混匀，5-10min后即可分离出血浆，转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.3 拭子、分泌物等样品：在装有拭子或分泌物的离心管中加入500µL PBS或生理盐水，剧烈振荡30s。棉拭子尽量挤出液体转移到无RNA酶污染的离心管中，6000rpm离心20s，取上清备用。
6.1.4 病灶组织样品：称取组织约0.1g于研磨器或组织匀浆器中研磨(最好置于冰上或加入液氮)，再加1mL生理盐水研磨至无块状物，然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液于1.5mL灭菌离心管中。
6.2 RNA提取
可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的RNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光qRT-PCR反应液(ALV-J-qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合物 1 µL N×1 µL
总量 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(ALV-J-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qRT-PCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 10 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 45 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM，淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1） 阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
（2） 阳性对照(ALV-J-PTC)：均产生扩增曲线。
（3） 以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
（1） 在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明ALV-J核酸阳性。
（2） Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明ALV-J核酸阴性。
（3） 如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4） 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行ALV-J qRT-PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明ALV-J核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1） 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2） 所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含RNA酶。
（3） PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4） 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5） 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。




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·猪钩端螺旋体病(LPP)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA437
等级：科研实验专用
规格：48次/盒|96次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对钩端螺旋体特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对钩端螺旋体的核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

二、用途
本试剂盒适用于检测动物内脏、血液等样本中的钩端螺旋体，用于钩端螺旋体感染的辅助诊断，其检测结果仅供参考。

三、试剂盒组成：

 

组份	数量	规格
Lep反应液(Lep-qPCR MIX)	1管	672μL/管
核酸提取液(DNA Extraction)	2管	1.5mL/管
酶混合物(Enzymes MIX)	1管	48μL/管
阴性对照(NTC)	1管	50μL/管
Lep阳性对照(Lep-PTC)	1管	50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为12个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
病死动物取心、肝、脾、肺、肾、淋巴结等组织1g；活动物用无菌注射器抽取3～5mL 血液。
6.2 样品前处理
每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g，手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液 100µL于 1.5mL灭菌离心管中；血液样本：取抗凝血下层血细胞 50µL，加入 100µL 双蒸水吹匀。
6.3 DNA提取
6.3.1 对上述处理好的样本加入等体积核酸提取液(固体标本加入50μL核酸提取液)，100℃恒温处理10min，13000rpm离心5min，取上清液转移至新的1.5mL EP管，-20℃保存；
6.3.2 DNA的提取也可以采用商业化DNA提取试剂盒。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Lep-qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：

试剂	每个反应加入的量	N个反应加入的量
荧光PCR反应液	14µL	N×14µL
酶混合物	1 µL	N×1 µL
总量	15 µL	N×15µL

计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(Lep-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件：

	1循环	50℃ for 2 min
预变性	1循环	95℃ for 10 min
PCR扩增	40循环	95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec

在60℃延伸时收集荧光信号 。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1）阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
（2）阳性对照(Lep-PTC)：均产生扩增曲线。
（3）以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1)在试验成立的条件下，Ct值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线，表明Lep核酸阳性。
（2）Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明Lep核酸阴性。
（3）如果Ct值>35，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4）对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行Lep 检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明Lep核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1）初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2）所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3）PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4）样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5）试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。


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