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流行性腮腺炎病毒(MV)核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)

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  • ¥850 - 2680
  • LMAI Bio
  • LM1112P
  • 中国/美国/英国
  • 2025年07月15日
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      流行性腮腺炎病毒(MV)核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)

    • 保质期

      12个月

    • 供应商

      联迈生物

    • 保存条件

      -20℃

    • 规格

      50次/100次

    产品细节图片1
    流行性腮腺炎病毒(MV)核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)
    ()RNA提取
    取液氮冻存脑组织置于玻璃匀浆器中,按100g:3ml的比例加入Trizol试剂,严格按照TrizolRNA提取试剂盒说明书的流程进行。
    (1)Trizol(按3ml/100mg组织,宁多勿少)置于玻璃匀浆器中匀浆后,冰浴10-15min
    (2)移入1.5mlEP管中,4ºC 13000g离心10min
    (3)上清液移至另一EP管中,室温放置10-15min
    (4)加入0.2ml氯仿/1mlTrizol,振荡15s,室温置5min
    (5)4ºC 12000g离心15min
    (6)仔细吸取上层水相,移至新的EP管中。
    (7)加入0.5ml异丙醇/1mlTrizol,振摇,置室温10min
    (8)4ºC 12000g离心10minEP管底部可见白色沉淀物。
    (9)弃上清,纸巾吸干,加入75%乙醇1ml,振摇,充分洗涤沉淀。
    (10)4ºC 11000g离心5min
    (11)吸尽乙醇,空气干燥10min(可离心加快干燥,尽量吸尽离心液体)。
    (12)半透明时将RNA溶于去核酸酶的水20ul中(可吹打混匀),-20ºC冻存备用。
    (13)所提取的总RNA用核酸蛋白分析仪分析RNA含量和纯度,所有标本260/280nm吸光度的比值均为1.8-2.0
    (14)取所提取的总RNA1%琼脂糖凝胶电泳,显示出清晰的28s18s两条rRNA
    流行性腮腺炎病毒(MV)核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)
    ()逆转录反应
    DEPC 9ul
    dig primer 1ul
    5×buffer 4ul
    10M dNTPmix 2ul
    RNA酶抑制剂 1ul
    RNA 2ul 70ºC 5min
    逆转录酶 1ul
    20ul 42ºC 60min(+?)
    70ºC 10min
    4ºC ∞
    ()PCR反应
    DEPC水(可用高压双蒸水) 17.5ul
    10×Taq buffer 2.5ul
    MgCl2 2.0ul
    10M dNTP Mix 0.5ul
    上游引物 0.5ul
    下游引物 0.5ul
    Tap(5u/ul) 0.5ul
    CDNA 1.0ul
    25ul
    PCR仪参数设置
    94 ºC
    5min 94 ºC ? ºC 72 ºC
    30s 45s 45s 72ºC 4ºC
    7min ∞
    流行性腮腺炎病毒(MV)核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)
    ()电泳
    (1)20ml 0.5×TBE
    0.3-0.4g琼脂糖
    煮沸,配成1.5-2.0%琼脂糖凝胶(RNA1.0%
    (2)冷切至60 ºC,加入4ulEB,倒入槽中(8孔梳),室温冷切30min
    (3)拔梳,加入4ulPCR产物+1ul上样缓冲液
    (4)电压100-135V
    (5)UVP成像系统观察
    试剂配制
    5×TBE配制方法(1L计)
    Tris-Base 54g
    硼酸 27.5g
    EDTA 3.72g
    加双蒸水至1L
    2%琼脂糖凝胶配制方法
    琼脂糖 0.4g
    0.5×TBE 20ml
    EB 4ul
    方法的改进版:室温冷切10min,放至4ºC冰箱20min
    相关技巧
    1、注意反应体系的一致,可分装
    2、先P内参,检验CDNA的完整性
    3、首先考虑退火温度
    4、注意引物的设计
    5、若目的条带无法到达指定位置,可先或晚于MAKER电泳
    6、通过加量或减量PCR产物来达到灰度的调整
    7、必要时可行标本间替代
    8、可设计相应大小的内参来达到最终目的
    92度水浴箱的妙用
    1. 必要时进行相关技术处理
    流行性腮腺炎病毒(MV)核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)问题解答
    无条带
    反应体系错误。重新配置反应体系确保各种试剂加入的量没有问题。
    PCR程序出错。检测PCR仪程序是否正确。
    DNA胶问题。DNA凝胶电泳时加入阳性对照。
    退火温度不合适。以2度为梯度设计梯度PCR反应优化退火温度。
    DNA模板量太少。增加DNA模板量。
    引物错误。利用BLAST检查引物特异性或重新设计引物。
    DNA模板中存在抑制剂。确保DNA模板干净
    模板有复杂结构。加入DMSO,BSA或者甜菜碱。可尝试递减PCR
    PCR产物量过少
    退火温度不合适。以2度为梯度设计梯度PCR反应优化退火温度。
    DNA模板量太少。增加DNA模板量。
    PCR循环数不足。增加反应循环数。
    引物量不足。增加体系中引物含量。
    延伸时间太短。以1kb/分钟的原则设置延伸时间。
    变性时间过长。变性时间过长会导致DNA聚合酶失活。
    DNA模板中存在抑制剂。确保DNA模板干净
    有杂带
    复制提前终止。使用非热启动的聚合酶时常有发生。冰上准备反应体系或采用热启动聚合酶。
    引物退火温度过低。以2度为梯度设计梯度PCR反应优化退火温度。
    反应缓冲液未完全融化或未充分混匀。确保反应缓冲液融化完全并彻底混匀。
    引物特异性差。利用BLAST检查引物特异性或重新设计引物。
    引物量过多。减少反应体系中引物的用量。
    模板量过多。质粒DNA的用量应<50ng,而基因组DNA则应<200ng
    外源DNA污染。确保操作的洁净。
    流行性腮腺炎病毒(MV)核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)条带弥散
    复制提前终止。使用非热启动的聚合酶时常有发生。冰上准备反应体系或采用热启动聚合酶。
    模板量过多。质粒DNA的用量应<50ng,而基因组DNA则应<200ng
    酶量过多。减少DNA聚合酶的使用量。
    循环数过多。减少反应循环数至30.
    引物浓度不够优化。对引物进行梯度稀释重复PCR反应。
    引物错误。利用BLAST检查引物特异性或重新设计引物。
    阴性对照出现条带
    试剂,枪头,工作台污染。使用全新的试剂和枪头,对工作台进行清洁。
    条带大小与理论不符
    污染。使用全新的试剂和枪头,对工作台进行清洁。
    模板或引物使用错误。更换引物和模板。
    基因亚型。对研究的基因进行序列分析和BLAST研究。
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