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- 详细信息
- 技术资料
- 保存条件:
阴凉干燥
- 保质期:
12个月
- 英文名:
Ponceau S Staining Solution
- 库存:
201
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。
北京百奥莱博专业生产销*(代"售")即用型丽春红染色液多少钱,我公司供应的分子生物学试剂品类齐全,且具有优势价格,欢迎新老客户垂询订购。
名称:即用型丽春红染色液多少钱
产地:国产|进口
品牌:百奥莱博
英文名:Ponceau S Staining Solution
编号:RFT056
本染色液为即用型工作液,可以直接使用,不用稀释。丽春红染色液可以用于PVDF膜、硝酸纤维素膜(NC膜)和醋酸纤维素膜上的蛋白的检测。丽春红带负电荷,可以与带正电荷的*基酸残基结合,同时丽春红也可以与蛋白的非极性区相结合,从而形成红色的条带。注:丽春红染色液不适用于尼龙膜上的蛋白的检测。丽春红对蛋白的染色是可逆的,染色后可以用蒸馏水,PBS或其它适当溶液洗去。丽春红对蛋白的检测下限是250ng。
使用方法:
1、电泳结束后,将PVDF膜、硝酸纤维素膜或醋酸纤维素膜浸泡到适量丽春红染色液中,摇动3-5分钟或更长时间,直至出现清晰条带。
2、用蒸馏水漂洗2-3次,每次3-5分钟,直到膜背景干净为止。
3、观察保存结果。
储存条件:室温,有效期12个月。
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即用型丽春红染色液多少钱关键词:RFT056,即用型丽春红染色液,Ponceau S Staining Solution
·PAGE预制胶(8-16%)
编号:RFT155
规格:10gel×10孔
本PAGE预制胶是一款高性能的小型聚丙*(代"烯")酰胺凝胶,能满足客户上样量大的需求。其独特的胶板设计可以提高条带分辨率,改善样品在上样孔里的分布状态,使得条带更加均匀。该预制胶采用独特的凝胶缓冲系统,比常规的Tris-Glycine系统具有更强的缓冲能力,在pH中性条件下灌注,能够更好地减少聚丙*(代"烯")酰胺的降解,提高凝胶稳定性。本PAGE预制胶不含有SDS,依赖于采用合适的电泳缓冲液和相应试剂,是SDS-PAGE和非变性凝胶电泳的理想材料。依赖特有的灌注技术可以保证预制胶批次间稳定性和条带分布一致性。本PAGE预制胶兼容实验室最为常用的Tris-Glycine电泳缓冲液,而不必使用昂贵的Tris-MOPS或Tris-MES电泳缓冲液,有效降低成本。独特的凝胶配方,可以高电压电泳,25-30分钟完成电泳,能够实现高效、可靠地分离蛋白质,便于后续染色或转膜检测。
本PAGE预制胶提供不同浓度的梯度胶和固定浓度胶。梯度胶的浓度包括4-20%、4-12%和8-16%;固定浓度胶包括8%、10%、12%和15%。每种浓度的预制胶有12个点样孔。胶板尺寸:长×宽×高为100 × 80 ×50 mm;凝胶尺寸:长×宽×厚为80×70×1 mm。
产品特点:
1、适用范围广:配合不同电泳缓冲液,能进行变性和非变性电泳适合大多数小型电泳槽
2、高分辨率:蛋白条带分离更为清晰和均一
3、超快电泳:可以260-300V高电压电泳,25-30分钟结束电泳
4、超长保质期:室温可稳定保存6个月,2-8℃可保存24个月
5、重复性高:不同批次预制胶的一致性好
6、物美价廉:兼容Tris-甘*酸缓冲液,节约实验成本
其他可选PAGE预制胶:
PAGE预制胶(8%)
PAGE预制胶(10%)
PAGE预制胶(12%)
PAGE预制胶(15%)
PAGE预制胶(4~12%)
PAGE预制胶(4~16%)
PAGE预制胶(4~20%)
即用型丽春红染色液多少钱关键词:RFT056,即用型丽春红染色液,Ponceau S Staining Solution
·2×ligation solution MasterMix
编号:RFT108
规格:150μl
2×ligation solution MasterMix是含有T4 DNA Ligase,ligation buffer的2×MasterMix,实验时,只需加入片段和载体即可进行连接反应。适用于DNA片段和载体DNA的连接以及DNA片段和Linker或Adaptor DNA的连接。按照10μl连接体系计算,每次使用5μl,可以使用30次。
注意事项
1、2×ligation solution MasterMix由于含有T4 DNA ligase,使用前冰浴中彻底融化,混匀后使用。
2、为了提高转化效率,转化时建议所加入连接产物的量不要超过感受态细胞体积的10%。
使用方法:
一、DNA片段和载体DNA的连接
(1)粘性末端的连接
1.反应体系:
| 10μl体系 | 终浓度 | |
| 线性载体DNA | xμl | 10-50 ng |
| 插入DNA片段 | yμl | 插入片段:载体=1:1-5:1* |
| 2×ligation solution MasterMix | 5μl | 1× |
| ddH2O | up to 10μl |
注意:载体与插入片段的摩尔数比需要优化:一般vector:insert在1:1~1:5之间均可得到较好的结果。用以下公式计算片段摩尔数:pmol数= DNA量(ng)/(660×片段bp数)×1000。例如:插入片段2000bp,线性载体为3000bp,如果载体使用量为50ng(0.025pmol),10μl连接体系中vector:insert的摩尔比是1:3,则需要2000bp pmol数为0.075pmol,插入片段2000bp的使用量为100ng。
2、彻底轻柔混匀后,瞬间离心,将管壁上的溶液收集到管底。
3、反应条件:16℃孵育30分钟。
4、可取5μl连接产物热击转化50μl感受态细胞或取1-2μl连接产物电击转化50μl感受态细胞。
注意:
a.若要提高电转实验效率,推荐65℃孵育10分钟或70℃孵育5分钟以灭活T4 DNA Ligase后,用DNA产物纯化试剂盒或*仿抽提对连接后的DNA片段进行纯化后进行电击转化。
b.若要提高转化子数目,可将连接时间延长至1小时。
(2)平末端的连接
1、反应体系:
| 10μl体系 | 终浓度 | |
| 线性平末端载体DNA* | xμl | 10-50 ng |
| 插入DNA片段 | yμl | 插入片段:载体=1:1-5:1** |
| 2×ligation solution MasterMix | 5μl | 1× |
| ddH2O | up to 10μl |
注意:
a.平滑末端的载体与 DNA 片段进行连接时,应首先将载体进行去磷酸化处理,以防止其自身环化。
b.载体与插入片段的摩尔数比需要优化:一般vector:insert在1:1~1:5之间均可得到较好的结果。用以下公式计算片段摩尔数:pmol数= DNA量(ng)/(660×片段bp数)×1000。例如:插入片段2000bp,线性载体为3000bp,如果载体使用量为50ng(0.025pmol),10μl连接体系中vector:insert的摩尔比是1:3,则需要2000bp pmol数为0.075pmol,插入片段2000bp的使用量为100ng。
2、彻底轻柔混匀后,瞬间离心,将管壁上的溶液收集到管底。
3、反应条件:16℃孵育30分钟。
4、可取5μl连接产物热击转化50μl感受态细胞或取1-2μl连接产物电击转化50μl感受态细胞。
注意:
a.若要提高电转实验效率,推荐65℃孵育10分钟或70℃孵育5分钟以灭活T4 DNA Ligase后,用DNA产物纯化试剂盒或*仿抽提对连接后的DNA片段进行纯化后才能进行电击转化。
b.若要提高转化子数目,可将连接时间延长至1小时。
二、线性DNA的自身环化
1、反应体系:
| 10μl体系 | 终浓度 | |
| 线性载体DNA | xμl | 10-50 ng |
| 2×ligation solution MasterMix | 5μl | 1× |
| ddH2O | up to 10μl |
2、彻底轻柔混匀后,瞬间离心,将管壁上的溶液收集到管底。
3、反应条件:16℃孵育30分钟。
4、可取5μl连接产物热击转化50μl感受态细胞或取1-2μl连接产物电击转化50μl感受态细胞。
注意:若要提高电转实验效率,推荐65℃孵育10分钟或70℃孵育5分钟灭活T4 DNA Ligase后,用DNA产物纯化试剂盒或*仿抽提对连接后的DNA片段进行纯化后才能进行电击转化。
三、接头连接
1、反应体系:
| 10μl体系 | 终浓度 | |
| 线性DNA | xμl | 100-300 ng |
| 磷酸化接头 | yμl | 0.5-1 μg |
| 2×ligation solution MasterMix | 5μl | 1× |
| ddH2O | up to 10μl |
2、彻底轻柔混匀后,瞬间离心,将管壁上的溶液收集到管底。
3、反应条件:16℃孵育30分钟。
4、65℃孵育10分钟或70℃孵育5分钟灭活T4 DNA Ligase。连接产物可以直接进行限制性内切酶酶切反应。
储存条件:-20℃
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