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- 详细信息
- 技术资料
- 保存条件:
室温(15~30℃)
- 保质期:
长期
- 英文名:
Yeast Genomic DNA Extraction Kit
- 库存:
206
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。
北京百奥莱博专业生产供应北京WE0181型酵母基因组DNA提取试剂盒哪里卖,我公司销*(代"售")全品类的分子生物学试剂,价格优惠,欢迎广大科研工作者垂询订购。
名称:酵母基因组DNA提取试剂盒
英文名:Yeast Genomic DNA Extraction Kit
品牌:百奥莱博
规格:50次
编号:WE0181
产地:国产|进口
本试剂盒适用于从酵母样品中提取高纯度的总DNA,本品无需使用*酚、*仿等有机溶剂抽提,可获得最大为50 kb的DNA,同时对100 bp的DNA片段也能有效的回收。本试剂盒采用优化的缓冲液体系使裂解液中的DNA高效结合在硅胶膜上,而其他污染物可流过膜,使用低盐缓冲液或水洗脱,即可获得高纯度的DNA。提取的DNA可直接用于酶切、PCR、Real-Time PCR、文库构建、Southern Blot、分子标记等下游实验。
试剂盒组成:
| 组份 | 50次 |
| Buffer GTL | 15ml |
| Buffer GL | 15ml |
| Buffer GW1(浓缩液) | 13ml |
| Buffer GW2(浓缩液) | 15ml |
| Buffer GE | 15ml |
| 蛋白酶K | 25 mg |
| 蛋白酶K 储存液 | 1.25ml |
| Lyticase Working Buffer | 30ml |
| Lyticase | 300μl |
| Glass Beads | 2g |
| 吸附柱DM及收集管 | 50套 |
保存条件:Lyticase -20℃,其他组分室温(15~30℃)。
自备试剂:无水乙醇,β-巯基乙醇。
产品特点
1、适用于从酵母样品中分离纯化高纯度总DNA。
2、无需有机溶剂提取以及乙醇沉淀,彻底去除污染物及下游反应抑制物,快速提取高品质DNA。
3、Lyticase酶与玻璃珠共同作用,有效破除酵母细胞壁。
实验前准备及重要注意事项/strong>:
1、向蛋白酶K 中加入1.25ml 蛋白酶K 储存液使其溶解,-20℃保存。配制好的蛋白酶K 勿长时间室温放置,避免反复冻融,以免影响其活性。
2、样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。对于有些细胞壁较厚以及在培养阶段会产生大量代谢物的酵母,建议在生长早期收集样品。
3、Lyticase Working Buffer在使用前请加入β-巯基乙醇,使其终浓度为0.1%。
4、第一次使用前应按照试剂瓶标签说明在Buffer GW1和Buffer GW2中加入无水乙醇。
5、使用前请检查Buffer GTL和Buffer GL是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,请将Buffer GTL和Buffer GL于65℃水浴重新溶解。
6、如果下游实验对RNA污染比较敏感,可以在加入Buffer GL前加入4μl DNase-Free的RNase A(100 mg/ml),RNase A本试剂盒并未提供,如需要可单独向本公司订购,货号:WE0225S。
操作步骤:
1、取1-5ml酵母培养物(最多不超过5×107个细胞,一般对于酿酒酵母OD600=1.0时,相当于1-2×107细胞/ml),12000rpm(~13400×g)离心1分钟,收集菌体沉淀,尽量吸弃上清。
注意:菌液较多时,可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中。
2、酵母细胞壁的去除:向菌体中加入600μl Lyticase Working Buffer(使用前检查是否加入β-巯基乙醇,使其终浓度为0.1%),并加入5μl Lyticase,充分混匀。30℃处理30分钟。4000rpm(~1,500×g)离心10分钟,弃上清,收集沉淀。
注意:以上为5×107酵母细胞Lyticase用量,根据酵母的菌株和酵母细胞数量的不同,所用的Lyticase的浓度和孵育时间应该进行适当调整。
3、向沉淀中加入200μl Buffer GTL,加入40 mg玻璃珠(Glass Beads),涡旋5分钟。
4、加入20μl 蛋白酶K 混匀。55℃振荡水浴至细胞完全裂解。若无振荡水浴箱,温育期间每20-30分钟颠倒混匀一次。(一般不超过1小时细胞即可完全裂解)。
注意:如需去除RNA,在上述步骤完成后加入4μl 100 mg/ml 的RNase A溶液(货号:WE0225S),震荡混匀,室温放置5-10分钟。
5、12000rpm离心5分钟,小心吸取上清至新离心管中。
6、加入200μl Buffer GL,充分混匀。70℃孵育10分钟,其间颠倒混匀数次,12000rpm离心5分钟,将上清移到一个新的离心管中。
注意:若孵育后溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取的DNA不纯。
7、加入200μl无水乙醇,充分颠倒混匀,此时可能会出现絮状沉淀。短暂离心,使管壁和管盖上的液体集中到管底。
8、将步骤7所得溶液和沉淀全部加入到已装入收集管的吸附柱DM中,若一次不能加完溶液,可分多次转入。12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
9、向吸附柱中加入500μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
10、向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
注意:如需进一步提高DNA纯度,可重复步骤10。
11、12000rpm离心2分钟,倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟以彻底晾干。
12、将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中,向吸附柱的中间部位悬空加入50-200μl Buffer GE或灭菌水,室温放置2-5分钟,12000rpm离心1分钟,收集DNA溶液,-20℃保存DNA。
注意:
1)如果下游实验对pH值或EDTA敏感,可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响,若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围),pH值低于7.0时洗脱效率不高。
2)离心之前室温孵育5分钟可以增加产量。
3)用另外的50-200μl Buffer GE或灭菌水再次洗脱可以增加产量。
4)如果要提高DNA的终浓度,可以将步骤10所得的DNA洗脱液重新加至吸附膜上,重复步骤10;若洗脱体积小于200μl,可以增加DNA的终浓度,但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1μg,推荐用50μl Buffer GE或灭菌水洗脱。
5)因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响,如需长期保存,推荐用Buffer GE洗脱并于-20℃保存。
储存条件:室温(15~30℃)。
关键词:酵母基因组DNA提取试剂盒,Yeast Genomic DNA Extraction Kit,WE0181
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