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- 文献和实验
- 技术资料
- 服务名称:
稳定细胞系(株)构建服务
- 提供商:
北京义翘神州科技股份有限公司
- 规格:
询价
稳定细胞株是生物医学研究的重要工具,广泛应用于重组蛋白生产、抗体药物开发、基因功能研究等关键领域。义翘神州基于十余年蛋白表达研究经验,建立了成熟的基因过表达技术平台,提供从基因合成到高表达克隆交付的一站式解决方案。公司在慢病毒载体系统及其介导的稳定株构建方面经验丰富,尤其擅长解决RNAi研究及神经元细胞、干细胞、原代细胞等难转染细胞的表达问题。 我们为客户提供多类型细胞株构建服务,包括过表达细胞株、报告基因细胞株,同时也满足您制备多种标记的个性化定制服务,让您高效获取符合科研或药物开发需求的稳定表达细胞模型。
服务优势
检测用细胞株构建服务流程
技术路线

检测用细胞株构建服务内容
过表达细胞株构建服务内容
过表达细胞株是通过基因工程技术将目标基因稳定整合至宿主细胞基因组,使其在细胞内持续高效表达获得的稳定遗传细胞系。该类细胞株广泛应用于重组蛋白生产、基因功能研究、药物筛选等多个领域,尤其适用于需要长期表达外源基因的研究场景。

过表达细胞株构建服务内容
报告基因细胞株通过将荧光蛋白(如GFP、RFP)、荧光素酶(Luciferase)等报告基因与特定启动子或响应元件联用,构建至载体并整合到宿主基因组中。该类细胞株适用于药物筛选、转录调控研究、信号通路功能验证、高通量筛选平台构建等开发场景,是高灵敏度、高通量检测的理想工具。

服务案例
义翘神州具有成熟的检测用细胞株技术平台,已在数十种细胞中成功构建细胞系,可以在短时间内高效获取稳定细胞株。
单次跨膜蛋白基因过表达稳定株



多次跨膜蛋白基因过表达稳定株



悬浮细胞稳定株



多基因共表达细胞系
- K562细胞系CD64

- K562细胞系CD137L

K562细胞系CD86

- K562细胞系CD19

K562细胞系mbIL21

FAQs
什么是基因过表达?
基因过表达是指通过人工构建调控元件,使目标基因在宿主细胞中过量转录和翻译,从而显著提高其蛋白质产物的技术。该技术通过将目标基因构建到含有强启动子、筛选标记等功能元件的载体中实现。
细胞株的运输条件是什么?到货后如何储存?
细胞株通常采用干冰或液氮运输,到货后如在1周内使用,可将冻存管暂时存放于-80℃冰箱,避免反复冻融。长期储存建议转移至液氮罐保存。
细胞株构建中常用的筛选抗生素有哪些?
常用的筛选抗生素有:嘌呤霉素、新霉素/G418、潮霉素B、杀稻瘟菌素S等。
细胞株传代时需要注意哪些事项?
贴壁细胞传代时注意消化时间,不要消化过度,一些贴壁牢的细胞可选择在培养箱内消化,传代结束将培养板内细胞摇匀再放入培养箱。
细胞传达吹打时不要过度用力。
细胞不宜长得过满,细胞密度在90%左右即可传代,传代密度不宜过疏。
是否支持特定启动子或相应元件的定制?
支持。客户提供序列或响应元件,拼接后我们合成。
若细胞复苏后状态异常,如何处理?
可适当增加血清用量,如从10%的血清量增加到20%。
悬浮细胞可离心后用新鲜培养基重悬。
贴壁细胞可更换新鲜培养基后在培养箱内静置培养,经常观察贴壁情况。
客户评价
2025/2/14
我们自己构建不成功的细胞株,义翘帮忙做出来了,解决了我试验的重要环节,非常感谢。
张*意
2024/9/16
在义翘订购了很多次细胞株,合作很愉快,技术人员很专业,服务人员非常认真、耐心,国产的骄傲。
徐*
2024/4/27
在义翘订购了单抗制备业务,免疫用的抗原蛋白和筛选过程中用的过表达细胞株都是一起打包订购的,义翘的CRO业务很全面,可以一站式订购,非常便利、高效,筛选的单抗活性和亲和力效果都很好,后面还有几个靶点要做,还选义翘!
宋*
2023/10/18
实验中需要用到细胞株,经朋友介绍尝试义翘,第一次合作,前期方案沟通很细致,中间会反馈进展,也会和我讨论问题,交付很快,合作很顺利!
郭*帆
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文献和实验研究基因功能,最常见的起点就是过表达(Overexpression, OE): 想在目的细胞里长期稳定地高表达某个基因,过表达稳定细胞株应该怎么一步步构建? 先说结论: 主流方案是"慢病毒感染 + 抗生素筛选":把目的基因克隆到带抗性基因的慢病毒载体,包装病毒后感染目的细胞,用 puromycin 等抗生素筛掉未整合的细胞,qPCR/WB 验证后扩增冻存,就得到过表达稳转株。 构建前建议按这个顺序确认方案: 载体元件 → 病毒滴度 → MOI → 抗生素浓度 → 筛选形式(混合
想长期表达某个基因,但它一高表达细胞就死、一过表达表型全是"中毒"——这时候很多老师会想到诱导表达系统: Tet 诱导稳定细胞株(Tet-On)怎么构建?和普通稳转株差在哪?诱导倍数怎么验证? 先说结论: Tet 诱导稳转株的核心是把"表达开关"装进稳转系统:细胞先稳定表达调控蛋白(Tet-On 的 rtTA),再引入由 TRE 应答元件控制的目的基因。平时不表达或低表达,加入诱导剂(多西环素 doxycycline)后才按剂量诱导表达。构建框架仍是"感染 → 筛选 → 验证 → 冻存
想给内源基因加上荧光标签、引入点突变,或者在特定位点插入报告基因,就需要 CRISPR 敲入(Knock-In, KI): CRISPR KI 稳定细胞株怎么构建?为什么 KI 比 KO 难、周期更长?怎么验证敲入成功? 先说结论: KI 的核心是"Cas9 切割 + 同源重组修复(HDR)":用 sgRNA 引导 Cas9 在特定位点切割,同时提供带同源臂的修复模板(供体),把目的序列精确整合到基因组特定位点,再经单克隆分选和 PCR+测序验证,得到基因型明确的 KI 稳转株。与 KO
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