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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
RT
- 保质期:
一年
- 库存:
大量
- 供应商:
康朗生物
- 规格:
500ml
10×CAPS电转移缓冲液(不含甘氨酸,适合大分子量蛋白转移)
规格:500ml本产品作为蛋白电泳完毕后,将凝胶上蛋白电转移到PVDF 膜或其它膜上的缓冲液,pH11,含CAPS,不含有甘氨酸,本电泳缓冲液适合大分子量蛋白电转移。
使用时按10×电转移缓冲液:甲醇:蒸馏水=1:1:8 的比例配制成1×的工作液,就可以用于电转移实验。
储存:RT,有效期一年。
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文献和实验过硫酸胺 0.1 g ,加超纯水1.0 mL 溶解后,4 ℃ 保存,保存时间为 1 周。(-20 ℃长期保存) 30% 丙烯酰胺 溶于总体积为 50 mL 的水中,定容至 100 mL。室温保存于棕色瓶。 10× PBS(2L) NaOH 调 pH 值至 7.4,定容至 2 L。保存于室温。 还原型 5×SDS 上样缓冲液 混匀后,分装于 1.5 mL 离心管中,4 ℃ 可保存数周,-20 ℃ 可长期保存。 电泳液缓冲液 加蒸馏水溶解定容至 1000 mL 室温保存,1 次溶液可重复
对于大蛋白而言,其在凝胶电泳分离迁移较慢,而从凝胶转出也非常慢,因此对于这种大分子量蛋白应该用低浓度的凝胶,8%或更低,但因低浓度的胶非常易碎,所以操作时需十分小心, 2.大蛋白易在凝胶里形成聚集沉淀,因此;转膜时在电转移缓冲液加入终浓度为0.1%的SDS,以避免出现这种情况,甲醇易便SDS从蛋白上脱失,因此应降低电转移缓冲液中甲醇的浓度至10%或更低,以防止蛋白沉淀。 3.降低电转移缓冲液中甲醇的比例以促进凝胶的膨胀,易于大蛋白的转出。 4.如果使用PVDF,甲醇是必需
蛋白质印迹(Western blotting)方法原理和优化
胶。例如:4-12%Tris-glycine凝胶适合于30-200KD蛋白质的分离,而10-20%凝胶则能成功地分离6-15KD的蛋白质。SDS-PAGE凝胶通常为1.0到1.5mm厚;但蛋白转印最好使用更薄的胶。 凝胶电泳缓冲液 最常见的凝胶电泳缓冲液由Tris-甘氨酸或Tris-tricine组成。缓冲液可以包含0.1%去污剂,通常是SDS。Tris-甘氨酸凝胶可用于分离很宽分子量范围(6-200KD)的蛋白质,并可与变性或非变性条件相容。Tris-tricine最适于分离小分子蛋白质(
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