供应鼠尾光照测痛仪设备

大鼠痛觉模型制作

领取SD雄性大鼠，体重200-220g为宜试验前测试痛阈（我们用的是意大利Ugobasile的heat-flux meter测痛仪， 国 产的功能也不差），痛阈极端大/小的最好挑除不用试验前至少3天每日早晨9点－9点半，将大鼠放入观察笼中适应环境试验时用微量注射器抽取100-200ul甲醛（浓度自己定）于大鼠下肢脚掌皮内注射，注射后留置针头约30－60sec,放大鼠入笼，摄像，人员全部离开（非常重要！）以其抬足和舔舐足掌为指标记录相关数据大鼠的饲养时要勤换垫料（最好每天换），有鼠便溏稀时要及时

大鼠痛觉模型的建立方法

大鼠痛觉模型的建立分为下面几个步骤： 1、领取SD雄性大鼠，体重200-220g为宜。 2、试验前测试痛阈（作者采用仪器为意大利Ugobasile的heat-flux meter测痛仪），痛阈极端大/小的挑除不用。 3、试验前至少3天每日上午9点－9点半将大鼠放入观察笼中适应环境。 4、试验时用微量注射器抽取100-200ul甲醛（浓度可自己定）于大鼠下肢脚掌皮内注射，注射后留置针头约30－60秒。 5、试验时，将大鼠放入观察笼，摄像，人员必须全部离开。 6、以大鼠抬足和舔舐足掌

活细胞荧光成像的 6 个技巧

台上的培养箱还是全包裹显微镜的培养箱，首要原则是培养箱能够满足活细胞的所有需求，包括提供湿度和适当气体浓度的能力。 某些培养箱甚至带有可防止室内光线进入显微镜的遮光板，从而有助于提高信噪比。 6.使用锁焦设备减少达到正确对焦位置所需的Z轴帧数 由于活体样本会四处移动，因此务必确保在延时实验期间可以正确捕获焦平面图像。 不要通过 Z 轴序列在每个时间点将样品多次暴露在激发光照明下，而是要使用可在延时实验中保持聚焦的漂移补偿设备。