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- 文献和实验
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- 保存条件:
储存于阴凉干燥处(2-30℃)
- 保质期:
24个月
- 库存:
30
- 供应商:
泽叶生物
- 规格:
盒
(胶体金法)
【产品名称】
通用名:禽流感H7亚型抗体检测卡(胶体金法)
英文名:Test Kit for Antibodies to Avian Influenza Virus H7(GICA)
【包装规格】 50T/盒、25T/盒
【预期用途】 禽流感又名真性鸡瘟或欧洲鸡瘟,是由A型禽流感病毒(Avian Influenza Virus,AIV)引起的禽类的一种急性、高度致死性传染病,以急性败血性死亡到无症状带毒为特征。
本试剂用于检测禽类血清中禽流感H7亚型抗体,可用于免疫效果评价、辅助诊断等。
【原 理】
本试剂采用竞争性胶体金免疫层析试验(GICA)原理制成,对于H7亚型的禽流感病毒抗体有很好的敏感性。样本加入到加样孔后与AIV抗原、胶体金标记物一起沿层析膜移动,若样本中存在AIV-H7抗体则与胶体金标记物竞争AIV抗原,使检测线不显示紫红色,若样本中不存在AIV-H7抗体则产生颜色反应。
【试剂盒组成】
| 序号 | 名称 | 40T/盒 | 20T/盒 |
| 1 | 检测卡(含吸管) | 40个 | 20个 |
| 2 | 样本稀释液 | 40瓶 | 20瓶 |
| 3 | 棉签 | 40支 | 20支 |
| 4 | 说明书 | 1份 | 1份 |
【样本准备】
血清:按常规方法抽取2-3ml血液置洁净干燥的试管中,静置约1小时待血液凝固后于4000转/分钟离心10分钟(也可将血液静置约2小时,待血液凝固自然析出血清),分离血清。要求血清清亮,无溶血、无污染。血清样本短期可于2~8℃保存,长期需置-20℃保存。
全血:可采用加抗凝剂的全血作为检测样本(全血样本不能冷冻)。
【试验方法】
1.撕开检测卡铝箔包装袋,取出检测卡,放于平整、洁净的台面上。
2.用配套吸管吸取已准备好的样本,垂直而缓慢的滴加1滴(约25ul)到加样孔内(此时观察孔内没有液体流出)。
3.等待10分钟后用装有缓冲液的滴瓶滴加两滴(约60ul)缓冲液到加样孔。
4.室温下放置10-15分钟判断结果,超过30分钟的结果无效。
注意,过量加入样本或缓冲液会出现错误结果。
【结果判断】
1.阴性:在观察孔内,检测线区(T)及对照线区(C)同时出现紫红色线。意味着抗体水平低于HI滴度1:16。
2.阳性:在观察孔内,只有对照线区(C)出现一条紫红色线。意味着抗体水平等于或高于HI滴度1:32。
3.失效:在观察孔内,对照线区(C)不出现色线。
本试剂的检测阈值是HI试验1:32。所以通过对被检血清进行倍比稀释,找到其呈现阳性的最大稀释倍数,则可以得出抗体滴度。例如:将待检血清用生理盐水分别做1:2(一份血清加一份生理盐水,往后依次类推)、1:4、1:8稀释,然后将3份不同稀释倍数样本分别进行检测,如1:2、1:4都呈阳性,而1:8呈阴性,则呈现阳性的最大稀释倍数为1:4,那么此份样本的最终抗体滴度为25(1:32)乘以22(1:4)等于27(1:128)。
【试验结果的解释】
对于免疫后的样本,抗体水平的高低反映了免疫效果的高低。对于未经免疫的样本,阳性结果表明可能有AIV-H7感染,需结合临床及其他方法进行分析。
【试验方法的局限性】
该试验仅用于检测AIV-H7抗体水平。
【注意事项】
1.试验前请仔细阅读说明书,本产品提供的各种试剂仅供本实验用。
2.过期或铝箔袋破损的产品,均不可使用。
3.检测卡从冰箱中取出时应恢复到室温后打开,打开的检测卡应尽快使用以免受潮后失效。
4.去离子水、自来水、生理盐水不能作为阴性对照。
5.待检样本应新鲜清亮,避免使用污染浑浊、严重溶血、大量血脂、异常粘稠的样本。
6.避免接触检测卡上加样孔和检测窗处的层析膜。
7.试验的废弃物应视为污染物,并按当地相关规定妥善处理。
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文献和实验一、目的流感病毒的MDCK细胞分离方法是流感实验的关键技术,用于流感病毒的分离、培养。本SOP是为确保MDCK细胞分离流感病毒的操作准确、规范和可靠而制定。二、范围适用于实验室所有技术人员进行流感病毒的MDCK细胞分离。三、程序(一)生物安全要求H5,H7亚型高致病性禽流感病毒,H2N2亚型流感病毒的MDCK细胞分离实验室生物安全级别:BSL-3。实验操作人员需进行BSL-3防护,具体详见“生物安全个人防护SOP”。H5,H7亚型高致病性禽流感病毒,H2N2亚型流感病毒的MDCK细胞分离操作
、H3、H5、H7和H9等各亚型毒株,对野生型的人H5N1病毒则有更高的生产效率[15]。其工艺流程:复苏细胞库的Vero细胞,经方瓶和转瓶扩增种子细胞,接种至生物反应器中,经过反应器逐级放大至6000L反应器,控制细胞密度在2×106~3×106/mL,按一定的病毒感染复数(Multiplicity of infection,MOI)接种病毒,病毒吸附lh后加入胰酶,32~35℃孵育48~72 h后收获病毒液。 2.2 国内应用现状 国内禽流感疫苗或流感疫苗的生产工艺均采用鸡胚生产
实验室检测和快速诊断的标准如《GB/T 19438.1-2004禽流感病毒通用荧光RT-PCR检测方法》、《GB/T 19438.2-2004 H5亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法》、《GB/T 19438.3-2004 H7亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法》等。以上实时荧光定量PCR技术在禽流感检测方面的国家标准是该技术在当前的人感染猪流感诊断中应用的基础和前提。实时荧光定量PCR技术及在我国卫生应急中的应用要求实时荧光定量PCR技术(Real-time quantitative
技术资料暂无技术资料 索取技术资料









